Abstract The clinical success of T-cell receptor (TCR)-based immunotherapy depends on the efficacy and specificity of TCRs. Naturally occurring TCRs have limited anti-tumor potency due to their low affinity for tumor antigens. Affinity enhancement is a promising strategy to generate highly potent TCRs. However, it is concerned that affinity-enhanced TCRs are prone to lose specificity. We isolated low affinity TCRs specific for NY-ESO-1 157-165 /HLA-A*02:01 from peripheral blood mononuclear cells of healthy donors. An affinity-enhanced TCR candidate with optimal affinity and specificity was generated using phage display and an extensive set of in vitro and in vivo assays. Alanine scanning mutagenesis showed that the TCR candidate retained specificity by making extensive contacts to the side chains of NY-ESO-1 157-165 peptide. Adoptive transfer of T cells engineered with this candidate (termed TAEST16001) significantly inhibited tumor growth in subcutaneous, metastatic, and patient-derived xenograft (PDX) mouse tumor models. This study demonstrates that sophisticated engineering and screening techniques can be utilized to generate a clinical candidate TCR with potent anti-tumor activity without losing specificity. TAEST16001 was approved by the Center for Drug Evaluation (CDE) as the first TCR-based immunotherapy clinical trial in China ( ClinicalTrials.gov Identifier: NCT03159585 ).

We reported a case of recurrent liver dysfunction in an adult patient with a history of abnormal liver enzymes persisting for over ten years. The primary abnormalities included elevated levels of gamma-glutamyl transferase and alkaline phosphatase. Despite conducting a series of extensive etiological tests to identify common causes of liver disease, the diagnosis remained unclear. However, whole-exome next-generation sequencing revealed a homozygous intronic mutation in the ferrochelatase gene (c.315-48T>C), which may be associated with the patient's cholestasis.

The aim of this study was to fabricate novel transglutaminase (TGase)-mediated glycosylated whey protein isolate (WPI) nanoparticles for the encapsulation and delivery of curcumin. The influences of glycosylation on the physiochemical properties, stability, bioavailability, and antioxidant properties of WPI nanoparticles loaded with curcumin were investigated. Composite nanoparticles exhibited uniform distribution and small particle sizes. The main driving forces for the formation of curcumin nanoparticles were electrostatic interactions, hydrogen bonding, and hydrophobic interactions. The encapsulation and loading efficiency of curcumin after TGase-type glycosylation were significantly increased in comparison to WPI-curcumin nanoparticles. Glycosylated WPI-curcumin nanoparticles had stronger antioxidant properties and stability to resist external environmental changes than WPI-curcumin nanoparticles. In addition, glycosylated WPI-curcumin nanoparticles showed a controlled release and enhanced curcumin bioavailability in vitro gastrointestinal digestion. This study provides novel insights for self-assembled glycosylated protein nanoparticles as delivery systems for protecting hydrophobic nutrients.

Mast cells take up extracellular latent heparanase and store it in secretory granules. The present study examined whether the enzymatic activity of heparanase regulates its uptake efficiency. Recombinant mouse heparanase mimicking both the latent and mature forms (L-Hpse and M-Hpse, respectively) was internalized into mastocytoma MST cells, peritoneal cell-derived mast cells, and bone marrow-derived mast cells. The internalized amount of L-Hpse was significantly higher than that of M-Hpse. In MST cells, L-Hpse was continuously internalized for up to 8 h, while the uptake of M-Hpse was saturated after 2 h of incubation. L-Hpse and M-Hpse are similarly bound to the MST cell surface. The expression level of cell surface heparan sulfate was reduced in MST cells incubated with M-Hpse. The internalized amount of M-Hpse into mast cells was significantly increased in the presence of heparastatin (SF4), a small molecule heparanase inhibitor that does not affect the binding of heparanase to immobilized heparin. Enzymatically quiescent M-Hpse was prepared with a point mutation at Glu335. The internalized amount of mutated M-Hpse was significantly higher than that of wild-type M-Hpse but similar to that of wild-type and mutated L-Hpse. These results suggest that the enzymatic activity of heparanase negatively regulates the mast cell-mediated uptake of heparanase, possibly via the downregulation of cell surface heparan sulfate expression.