We have investigated the feedback control that prevents cells with incompletely assembled spindles from leaving mitosis. We isolated budding yeast mutants sensitive to the anti-microtubule drug benomyl. Mitotic arrest-deficient (mad) mutants are the subclass of benomyl-sensitive mutants in which the completion of mitosis is not delayed in the presence of benomyl and that die as a consequence of their premature exit from mitosis. A number of properties of the mad mutants indicate that they are defective in the feedback control over the exit from mitosis: their killing by benomyl requires passage through mitosis; their benomyl sensitivity can be suppressed by an independent method for delaying the exit from mitosis; they have normal microtubules; and they have increased frequencies of chromosome loss. We cloned MAD2, which encodes a putative calcium-binding protein whose disruption is lethal. We discuss the role of feedback controls in coordinating events in the cell cycle.

COVID-19, caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), has become a global pandemic and has claimed over 2 million lives worldwide. Although the genetic sequences of SARS-CoV and SARS-CoV-2 have high homology, the clinical and pathological characteristics of COVID-19 differ significantly from those of SARS. How and whether SARS-CoV-2 evades (cellular) immune surveillance requires further elucidation. In this study, we show that SARS-CoV-2 infection leads to major histocompability complex class Ι (MHC-Ι) down-regulation both in vitro and in vivo. The viral protein encoded by open reading frame 8 (ORF8) of SARS-CoV-2, which shares the least homology with SARS-CoV among all viral proteins, directly interacts with MHC-Ι molecules and mediates their down-regulation. In ORF8-expressing cells, MHC-Ι molecules are selectively targeted for lysosomal degradation via autophagy. Thus, SARS-CoV-2-infected cells are much less sensitive to lysis by cytotoxic T lymphocytes. Because ORF8 protein impairs the antigen presentation system, inhibition of ORF8 could be a strategy to improve immune surveillance.

Following emergence in late 2019, SARS-CoV-2 rapidly became pandemic and is presently responsible for millions of infections and hundreds of thousands of deaths worldwide. There is currently no approved vaccine to halt the spread of SARS-CoV-2 and only very few treatment options are available to manage COVID-19 patients. For development of preclinical countermeasures, reliable and well-characterized small animal disease models will be of paramount importance. Here we show that intranasal inoculation of SARS-CoV-2 into Syrian hamsters consistently caused moderate broncho-interstitial pneumonia, with high viral lung loads and extensive virus shedding, but animals only displayed transient mild disease. We determined the infectious dose 50 to be only five infectious particles, making the Syrian hamster a highly susceptible model for SARS-CoV-2 infection. Neither hamster age nor sex had any impact on the severity of disease or course of infection. Finally, prolonged viral persistence in interleukin 2 receptor gamma chain knockout hamsters revealed susceptibility of SARS-CoV-2 to adaptive immune control. In conclusion, the Syrian hamster is highly susceptible to SARS-CoV-2 making it a very suitable infection model for COVID-19 countermeasure development.

Abstract In spite of the successful development of effective countermeasures against Covid-19, variants have and will continue to emerge that could compromise the efficacy of currently approved neutralizing antibodies and vaccines. Consequently, novel and more efficacious agents are urgently needed. We have developed a bispecific antibody, 2022, consisting of two antibodies, 2F8 and VHH18. 2F8 was isolated from our proprietary fully synthetic human IDEAL (Intelligently Designed and Engineered Antibody Library)-VH/VL library and VHH18 is a single domain antibody isolated from IDEAL-nanobody library. 2022 was constructed by attaching VHH18 to the C-terminal of Fc of 2F8. 2022 binds two non-overlapping epitopes simultaneously on the RBD of the SARS-CoV-2 spike protein and blocks the binding of RBD to human angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2). 2022 potently neutralizes SARS-CoV-2 and all of the variants tested in both pseudovirus and live virus assays, including variants carrying mutations known to resist neutralizing antibodies approved under EUA and that reduce the protection efficiency of current effective vaccines. The half-maximum inhibitory concentration (IC50) of 2022 is 270 pM, 30 pM, 20 pM, and 1 pM, for wild-type, alpha, beta, and delta pseudovirus, respectively. In the live virus assay, 2022 has an IC50 of 26.4 pM, 13.3 pM, and 88.6 pM, for wild-type, beta, and delta live virus, respectively. In a mouse model of SARS-CoV-2, 2022 showed strong prophylactic and therapeutic effects. A single administration of 2022 intranasal (i.n.) or intraperitoneal (i.p.) 24 hours before virus challenge completely protected all mice from bodyweight loss, as compared with up to 20% loss of bodyweight in placebo treated mice. In addition, the lung viral titers were undetectable (FRNT assay) in all mice treated with 2022 either prophylactically or therapeutically, as compared with around 1×10 5 pfu/g lung tissue in placebo treated mice. In summary, bispecific antibody 2022 showed potent binding and neutralizing activity across a variety of SARS-CoV-2 variants and could be an attractive weapon to combat the ongoing waves of the COVID-19 pandemic propagated mainly by variants, especially, the much more contagious delta variant.

The COVID-19 pandemic and the resulting non-pharmaceutical interventions (NPIs) have led to changes in the epidemiology of other respiratory pathogens. This study was conducted to explore the epidemiological characteristics of 13 respiratory pathogens, including 11 respiratory viruses and 2 non-classical microorganisms, in hospitalised patients with acute respiratory tract infections (ARTIs) and to compare the prevalence of respiratory pathogens during and after the COVID-19 pandemic.

Summary SARS-CoV-2 infection have caused global pandemic and claimed over 5,000,000 tolls 1–4 . Although the genetic sequences of their etiologic viruses are of high homology, the clinical and pathological characteristics of COVID-19 significantly differ from SARS 5,6 . Especially, it seems that SARS-CoV-2 undergoes vast replication in vivo without being effectively monitored by anti-viral immunity 7 . Here, we show that the viral protein encoded from open reading frame 8 (ORF8) of SARS-CoV-2, which shares the least homology with SARS-CoV among all the viral proteins, can directly interact with MHC-I molecules and significantly down-regulates their surface expression on various cell types. In contrast, ORF8a and ORF8b of SARS-CoV do not exert this function. In the ORF8-expressing cells, MHC-I molecules are selectively target for lysosomal degradation by an autophagy-dependent mechanism. As a result, CTLs inefficiently eliminate the ORF8-expressing cells. Our results demonstrate that ORF8 protein disrupts antigen presentation and reduces the recognition and the elimination of virus-infected cells by CTLs 8 . Therefore, we suggest that the inhibition of ORF8 function could be a strategy to improve the special immune surveillance and accelerate the eradication of SARS-CoV-2 in vivo.

ABSTRACT When a virus crosses from one host species to another, the consequences can be devastating. However, animal models to empirically evaluate cross-species transmission can fail to recapitulate natural transmission routes, physiologically relevant doses of pathogens, and population structures of naturally circulating viruses. Here, we present a new model of cross-species transmission where deer mice ( Peromyscus maniculatus ) are exposed to the natural virome of pet store mice ( Mus musculus ). Using RNA sequencing, we tracked viral transmission via fecal–oral routes and found the evidence of transmission of murine astroviruses, coronaviruses, and picornaviruses. Deep sequencing of murine kobuvirus revealed tight bottlenecks during transmission and purifying selection that leaves limited diversity present after transmission from Mus to Peromyscus . This work provides a structure for studying viral bottlenecks across species while keeping natural variation of viral populations intact and a high resolution look at within-host dynamics that occur during the initial stages of cross-species viral transmission. IMPORTANCE Viral spillover events can have devastating public health consequences. Tracking cross-species transmission in real-time and evaluating viral evolution during the initial spillover event are useful for understanding how viruses adapt to new hosts. Using our new animal model and next generation sequencing, we develop a framework for understanding intrahost viral evolution and bottleneck events, which are very difficult to study in natural transmission settings.