Background. Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) is caused by SFTS virus (SFTSV), a novel bunyavirus reported to be endemic in central and northeastern China. This article describes the first identified patient with SFTS and a retrospective study on SFTS in Japan.

We have compared the retrograde axonal transport of horseradish peroxidase (HRP), to the retrograde transport of HRP conjugated with wheat germ agglutinin (WGA). Morphometric studies have shown that WGA-HRP conjugates were 40 times more sensitive than free HRP, in the tracing of retrograde connections from the rat submandibular gland to the superior cervical ganglion. Also, WGA-HRP was more sensitive than free HRP in the tracing of retrograde connections from the rat tongue to the hypoglossal nucleus. Our findings with WGA-HRP are consistent with the observations by Schwab et al. who reported (-125I) WGA is a highly sensitive retrograde tracer (Brain Research 152:145, 1978 (22)).

Gut microbiota mediates the effects of diet, thereby modifying host metabolism and the incidence of metabolic disorders. Increased consumption of omega-6 polyunsaturated fatty acid (PUFA) that is abundant in Western diet contributes to obesity and related diseases. Although gut-microbiota-related metabolic pathways of dietary PUFAs were recently elucidated, the effects on host physiological function remain unclear. Here, we demonstrate that gut microbiota confers host resistance to high-fat diet (HFD)-induced obesity by modulating dietary PUFAs metabolism. Supplementation of 10-hydroxy-cis-12-octadecenoic acid (HYA), an initial linoleic acid-related gut-microbial metabolite, attenuates HFD-induced obesity in mice without eliciting arachidonic acid-mediated adipose inflammation and by improving metabolic condition via free fatty acid receptors. Moreover, Lactobacillus-colonized mice show similar effects with elevated HYA levels. Our findings illustrate the interplay between gut microbiota and host energy metabolism via the metabolites of dietary omega-6-FAs thereby shedding light on the prevention and treatment of metabolic disorders by targeting gut microbial metabolites.

The Omicron BA.5 variant of SARS-CoV-2 is known for its high transmissibility and its capacity to evade immunity provided by vaccine protection against the (original) Wuhan strain. In our prior research, we successfully produced the receptor-binding domain (RBD) of the SARS-CoV-2 spike protein in an E. coli expression system. Extensive biophysical characterization indicated that, even without glycosylation, the RBD maintained native-like conformational and biophysical properties. The current study explores the immunogenicity and neutralization capacity of the E. coli-expressed Omicron BA.5 RBD using a mouse model. Administration of three doses of the RBD without any adjuvant elicited high titer antisera of up to 7.3 × 105 and up to 1.6 × 106 after a booster shot. Immunization with RBD notably enhanced the population of CD44+CD62L+ T cells, indicating the generation of T cell memory. The in vitro assays demonstrated the antisera’s protective efficacy through significant inhibition of the interaction between SARS-CoV-2 and its human receptor, ACE2, and through potent neutralization of a pseudovirus. These findings underscore the potential of our E. coli-expressed RBD as a viable vaccine candidate against the Omicron variant of SARS-CoV-2.

ABSTRACT Male killing, the phenomenon of male death during development, is considered to be one of the advantageous strategies exerted by maternally transmitted microbes. Male killing has attracted interest in the fields of evolutionary biology and ecology for decades; however, little is known about its mechanism and origin. Here, we characterized and compared the effects of three distinct male killers, Wolbachia (Alphaproteobacteria), Spiroplasma (Mollicutes), and Osugoroshi virus (OGV) (Partitiviridae) in the tea pest moth Homona magnanima (Lepidoptera, Tortricidae). Regardless of the genetic sex (male: ZZ; female: ZW), female specific splice variants of the doublesex gene ( dsx ), a downstream regulator of the sex-determining gene cascade, was expressed in H. magnanima harbored either male-killing Wolbachia or Spiroplasma . However, OGV and non-male-killing Wolbachia did not alter dsx splicing. RNA sequencing and quantitative PCR assays demonstrated that male-killing Wolbachia impaired the host’s dosage compensation system by altering the global gene expression of the Z chromosome (corresponding to Bombyx mori chromosome 1 and 15) in males, whereas Spiroplasma did not affect dosage compensation. In contrast, the partiti-like virus OGVs did not affect sex-determination cascades or dosage compensation systems. Besides, male killers distinctly altered host gene expression and metabolomes associated with physiology, morphology, and diverse metabolic pathways. Moreover, Wolbachia and Spiroplasma infections triggered abnormal apoptosis only in male embryos. These findings suggest that distantly related microbes employ distinct machineries to kill identical host males, which have been acquired through independent evolutionary processes. Importance Male-killing caused by diverse microbes has attracted substantial attention. However, it remains unclear how such male killers have evolved similar phenotypes, in part because male-killing mechanisms have been studied using different insect models. Here, by comparing three phylogenetically distinct male killers, Wolbachia, Spiroplasma , and a partiti-like virus, in an identical host, we provide evidence that microbes can affect male viability through distinct machinery, demonstrating distinct evolutionary scenarios for microbes to acquire make-killing ability. These findings provide insight into new directions for studying microbe–host interactions.

Classical swine fever (CSF) re-emerged in Japan in 2018, with the epidemic virus identified as genotype 2.1, which is moderately virulent and more difficult to detect and control than the highly virulent strain. Domestic pigs were administered with GPE

Detection of microorganisms from bovine using real-time PCR (Dembo PCR) is a comprehensive detection technique that was developed to detect pathogens causing bovine diseases. In Japan, the definitive tests for monitored infectious diseases, which are defined by law, are carried out at government agencies. On the other hand, the existence of pathogens other than monitored infectious diseases are not well understood. From the perspective of livestock quarantine, it is important to make it possible to identify pathogens other than monitored infectious diseases, so we extended the existing Dembo PCR system in this study. In particular, the number of targets other than monitored infectious disease was increased. The new version of Dembo PCR may be useful in elucidating new pathologies associated with multiple pathogens.

Abstract The SARS‐CoV‐2 pandemic has challenged more scientists to detect viruses and to visualize virus‐containing spots for diagnosis and infection control; however, detection principles of commercially available technologies are not optimal for visualization. Here, a convenient and universal homogeneous detection platform named proximity‐unlocked luminescence by sequential enzymatic reactions from antibody and antibody/aptamer (PULSERAA) is developed. This is designed so that the signal appears only when the donor and acceptor are in proximity on the viral surface. PULSERAA specifically detected in the range of 25–500 digital copies/mL of inactivated SARS‐CoV‐2 after simply mixing reagents; it is elucidated that the accumulation of chemical species in a limited space of the viral surface contributed to such high sensitivity. PULSERAA was quickly adapated to detect another virus variant , inactivated influenza A virus, and infectious SARS‐CoV‐2 in a clinical sample. Furthermore, on‐site (direct, rapid, and portable) visualization of the inactivated SARS‐CoV‐2‐containing spots by a conventional smartphone camera was achieved, demonstrating that PULSERAA can be a practical tool for preventing the next pandemic in the future.

Enterovirus G (EV-G) belongs to the family of Picornaviridae. Two types of recombinant porcine EV-Gs carrying papain-like cysteine protease (PLCP) gene of porcine torovirus, a virus in Coronaviridae, are reported. Type 1 recombinant EV-Gs are detected in pig feces in Japan, USA, and Belgium and carry the PLPC gene at the junction site of 2C/3A genes, while PLPC gene replaces the viral structural genes in type 2 recombinant EV-G detected in pig feces in a Chinese farm. We identified a novel type 2 recombinant EV-G carrying the PLCP gene with flanking sequences in place of the viral structural genes in pig feces in Japan. The ~0.3 kb-long upstream flanking sequence had no sequence homology with any proteins deposited in GenBank, while the downstream ~0.9 kb-long flanking sequence included a domain having high amino acid sequence homology with a baculoviral inhibitor of apoptosis repeat superfamily. The pig feces, where the novel type 2 recombinant EV-G was detected, also carried type 1 recombinant EV-G. Although the phylogenetic analysis suggested that these two recombinant EV-Gs have independently evolved, type 1 recombinant EV-G might have served as a helper virus by providing viral structural proteins for dissemination of the type 2 recombinant EV-G.