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Stefan Vermeulen
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Loss-of-function mutations in LEMD3 result in osteopoikilosis, Buschke-Ollendorff syndrome and melorheostosis

Jan Hellemans et al.Oct 17, 2004
Osteopoikilosis, Buschke-Ollendorff syndrome (BOS) and melorheostosis are disorders characterized by increased bone density1. The occurrence of one or more of these phenotypes in the same individual or family suggests that these entities might be allelic2,3,4. We collected data from three families in which affected individuals had osteopoikilosis with or without manifestations of BOS or melorheostosis. A genome-wide linkage analysis in these families, followed by the identification of a microdeletion in an unrelated individual with these diseases, allowed us to map the gene that is mutated in osteopoikilosis. All the affected individuals that we investigated were heterozygous with respect to a loss-of-function mutation in LEMD3 (also called MAN1), which encodes an inner nuclear membrane protein. A somatic mutation in the second allele of LEMD3 could not be identified in fibroblasts from affected skin of an individual with BOS and an individual with melorheostosis. XMAN1, the Xenopus laevis ortholog, antagonizes BMP signaling during embryogenesis5. In this study, LEMD3 interacted with BMP and activin-TGFβ receptor–activated Smads and antagonized both signaling pathways in human cells.
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Free DNA partially clarifies discrepancies between qPCR and the conventional phage quantification method

Saar Overfelt et al.Dec 3, 2024
To use phages in a personalized therapy and industrial applications, an accurate quantification is needed. The gold standard method, namely the culture-based double agar overlay (DAO) method, provides an accurate estimate of the number of infectious phages but is laborious and time-intensive. Quantitative polymerase chain reaction (qPCR) can be used as a fast alternative but tends to overestimate the number of infectious phage particles. Here we describe the use of a DNase treatment before quantification of the Staphylococcus aureus phage ISP with qPCR to obtain a more accurate estimate of the number of infectious phage particles. We showed that DNase treatment results in a significant decrease of the concentration when measured with qPCR although for two out of three tested ISP phage stocks, there was still a significant difference with the DAO method. We also showed that the discrepancy between quantification with qPCR and the DAO method is dependent on the storage period of the phage stock, with a larger discrepancy for older stocks. Additionally, we used negative contrast immune electron microscopy to confirm the presence of DNA in the medium of the phage stock and the impact of the DNase treatment on the free DNA.