A more accurate means of prognostication in breast cancer will improve the selection of patients for adjuvant systemic therapy.

Based on the hypothesis that features of the molecular program of normal wound healing might play an important role in cancer metastasis, we previously identified consistent features in the transcriptional response of normal fibroblasts to serum, and used this “wound-response signature” to reveal links between wound healing and cancer progression in a variety of common epithelial tumors. Here, in a consecutive series of 295 early breast cancer patients, we show that both overall survival and distant metastasis-free survival are markedly diminished in patients whose tumors expressed this wound-response signature compared to tumors that did not express this signature. A gene expression centroid of the wound-response signature provides a basis for prospectively assigning a prognostic score that can be scaled to suit different clinical purposes. The wound-response signature improves risk stratification independently of known clinico-pathologic risk factors and previously established prognostic signatures based on unsupervised hierarchical clustering (“molecular subtypes”) or supervised predictors of metastasis (“70-gene prognosis signature”).

Genome-wide transcript profiling was used to monitor signal transduction during yeast pheromone response. Genetic manipulations allowed analysis of changes in gene expression underlying pheromone signaling, cell cycle control, and polarized morphogenesis. A two-dimensional hierarchical clustered matrix, covering 383 of the most highly regulated genes, was constructed from 46 diverse experimental conditions. Diagnostic subsets of coexpressed genes reflected signaling activity, cross talk, and overlap of multiple mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathways. Analysis of the profiles specified by two different MAPKs—Fus3p and Kss1p—revealed functional overlap of the filamentous growth and mating responses. Global transcript analysis reflects biological responses associated with the activation and perturbation of signal transduction pathways.

The most important product of the sequencing of a genome is a complete, accurate catalogue of genes and their products, primarily messenger RNA transcripts and their cognate proteins. Such a catalogue cannot be constructed by computational annotation alone; it requires experimental validation on a genome scale. Using ‘exon’ and ‘tiling’ arrays fabricated by ink-jet oligonucleotide synthesis, we devised an experimental approach to validate and refine computational gene predictions and define full-length transcripts on the basis of co-regulated expression of their exons. These methods can provide more accurate gene numbers and allow the detection of mRNA splice variants and identification of the tissue- and disease-specific conditions under which genes are expressed. We apply our technique to chromosome 22q under 69 experimental condition pairs, and to the entire human genome under two experimental conditions. We discuss implications for more comprehensive, consistent and reliable genome annotation, more efficient, full-length complementary DNA cloning strategies and application to complex diseases.