Following its emergence in late 2019, the spread of SARS-CoV-21,2 has been tracked by phylogenetic analysis of viral genome sequences in unprecedented detail3–5. Although the virus spread globally in early 2020 before borders closed, intercontinental travel has since been greatly reduced. However, travel within Europe resumed in the summer of 2020. Here we report on a SARS-CoV-2 variant, 20E (EU1), that was identified in Spain in early summer 2020 and subsequently spread across Europe. We find no evidence that this variant has increased transmissibility, but instead demonstrate how rising incidence in Spain, resumption of travel, and lack of effective screening and containment may explain the variant's success. Despite travel restrictions, we estimate that 20E (EU1) was introduced hundreds of times to European countries by summertime travellers, which is likely to have undermined local efforts to minimize infection with SARS-CoV-2. Our results illustrate how a variant can rapidly become dominant even in the absence of a substantial transmission advantage in favourable epidemiological settings. Genomic surveillance is critical for understanding how travel can affect transmission of SARS-CoV-2, and thus for informing future containment strategies as travel resumes. Analysis of the spread of the 20E (EU1) variant of SARS-CoV-2 through Europe suggests that international travel and insufficient containment, rather than increased transmissibility, led to a resurgence of infections.

A monkeypox (MPX) outbreak has expanded worldwide since May 2022. We tested 147 clinical samples collected at different time points from 12 patients by real-time PCR. MPX DNA was detected in saliva from all cases, sometimes with high viral loads. Other samples were frequently positive: rectal swab (11/12 cases), nasopharyngeal swab (10/12 cases), semen (7/9 cases), urine (9/12 cases) and faeces (8/12 cases). These results improve knowledge on virus shedding and the possible role of bodily fluids in disease transmission.

Abstract The objective of this study was to assess the performance of direct real time RT-PCR detection of SARS-CoV-2 in heated saliva samples, avoiding the RNA isolation step. Oropharyngeal and nasopharyngeal swabs together with saliva samples were obtained from 51 patients clinically diagnosed as potentially having COVID-19. Two different methods were compared: 1. RNA was extracted from 500 μl of sample using a MagNA Pure Compact Instrument with an elution volume of 50μl and 2. 700µL of saliva were heat-inactivated at 96°C for 15 minutes, and directly subjected to RT-PCR. One step real time RT-PCR was performed using 5 μl of extracted RNA or directly from 5 μl of heated sample. RT-PCR was performed targeting the SARS-CoV-2 envelope (E) gene region. Diagnostic performance was assessed using the results of the RT-PCR from nasopharyngeal and oropharyngeal swabs as the gold standard. The overall sensitivity, specificity, positive and negative predictive values were 81.08%, 92.86%, 96.77% and 65.00%, respectively when RNA extraction was included in the protocol with saliva, whereas sensitivity, specificity, positive and negative predictive values were 83.78%, 92.86%, 68.42% and 96.88%, respectively, for the heat-inactivation protocol. However, when the analysis was performed exclusively on saliva samples with a limited time from the onset of symptoms (<9 days, N=28), these values were 90%, 87.5%, 44% and 98.75% for the heat-inactivation protocol. The study showed that RT-PCR can be performed using saliva in an RNA extraction free protocol, showing good sensitivity and specificity.