Aicardi-Goutieres syndrome (AGS) is a genetic encephalopathy whose clinical features mimic those of acquired in utero viral infection. AGS exhibits locus heterogeneity, with mutations identified in genes encoding the 3'-->5' exonuclease TREX1 and the three subunits of the RNASEH2 endonuclease complex. To define the molecular spectrum of AGS, we performed mutation screening in patients, from 127 pedigrees, with a clinical diagnosis of the disease. Biallelic mutations in TREX1, RNASEH2A, RNASEH2B, and RNASEH2C were observed in 31, 3, 47, and 18 families, respectively. In five families, we identified an RNASEH2A or RNASEH2B mutation on one allele only. In one child, the disease occurred because of a de novo heterozygous TREX1 mutation. In 22 families, no mutations were found. Null mutations were common in TREX1, although a specific missense mutation was observed frequently in patients from northern Europe. Almost all mutations in RNASEH2A, RNASEH2B, and RNASEH2C were missense. We identified an RNASEH2C founder mutation in 13 Pakistani families. We also collected clinical data from 123 mutation-positive patients. Two clinical presentations could be delineated: an early-onset neonatal form, highly reminiscent of congenital infection seen particularly with TREX1 mutations, and a later-onset presentation, sometimes occurring after several months of normal development and occasionally associated with remarkably preserved neurological function, most frequently due to RNASEH2B mutations. Mortality was correlated with genotype; 34.3% of patients with TREX1, RNASEH2A, and RNASEH2C mutations versus 8.0% RNASEH2B mutation-positive patients were known to have died (P=.001). Our analysis defines the phenotypic spectrum of AGS and suggests a coherent mutation-screening strategy in this heterogeneous disorder. Additionally, our data indicate that at least one further AGS-causing gene remains to be identified.

ABSTRACT Background Glioblastoma (GBM) is a fatal and incurable brain cancer with a dismal prognosis. In order to impact on this disease, we need to understand how infiltrating, non resectable tumour cells resist chemoradiation and facilitate disease recurrence. To this end, we generated or acquired bulk tumour RNA sequencing data from 45 paired primary and locally recurrent GBM tumours (split into original and validation cohorts) from patients that received standard treatment. We also generated DNA methylation profiles for 9 pairs and sequenced RNA from single cells isolated from a patient derived GBM spheroid model at different timepoints following in vitro chemoradiation. Results We have identified a set of genes with Jumonji and AT-Rich Interacting Domain 2 (JARID2) binding sites in their promoters that are universally dysregulated in post-standard treatment recurrent GBMs compared to the primary tumour. The direction of dysregulation is patient-dependent and not associated with differential promoter DNA methylation. Our in vitro experiments suggest that this dysregulation occurs dynamically following treatment as opposed to resulting from selection of cells with specific expression profiles. Conclusion JARID2 is an accessory protein to a chromatin remodeling complex, responsible for histone modifications observed during cell state transitions in both normal brain and GBM. We propose that JARID2 facilitates GBM recurrence following treatment by indirect transcriptional reprogramming of surviving cells in whichever manner is needed to reproduce the phenotypic heterogeneity required for tumour regrowth in vivo . The mechanism of this reprogramming may present a therapeutic vulnerability for more effective treatment of GBM.