Super-resolution vibrational microscopy is a promising tool to increase the degree of multiplexing of nanometer-scale biological imaging, because the spectral linewidth of molecular vibration is about 50 times narrower than that of fluorescence. However, current techniques of super-resolution vibrational microscopy still suffer from various limitations including the need for cell fixation, high power loading or complicated frequency-modulated detection schemes. Herein we utilize photoswitchable stimulated Raman scattering (SRS) to develop a method that we call reversible saturable optical Raman transitions (RESORT) microscopy, which overcomes these limitations. We first describe a new kind of photoswitchable Raman probe designated DAE620 and then we employ a standard SRS detection scheme to validate its signal activation and depletion characteristics when exposed to low-power (microwatt level) continuous-wave laser light. By harnessing the SRS signal depletion of DAE620 through a donut-shaped beam, we demonstrate super-resolution vibrational imaging of mammalian cells with excellent chemical specificity and spatial resolution beyond the optical diffraction limit. Our results indicate RESORT microscopy to be an effective tool with high potential for multiplexed super-resolution imaging of live cells.