The authors report a new biomimetic nanodelivery platform in which polymeric nanoparticles enclosed in the plasma membrane of human platelets are used for disease-relevant targeting, and the therapeutic potential of the concept is demonstrated in animal models of coronary restenosis and systemic bacterial infection. The properties of blood platelets — small discoid cells that carry out a broad range of functions related to haemostasis — marks them out as prime candidates to form the basis of drug delivery systems. These authors report a new nanoparticle-based delivery platform, in which polymeric nanoparticles are enclosed in the plasma membrane of human platelets. They demonstrate the use of these platelet-membrane cloaked nanoparticles for antibiotic delivery in murine models for cardiovascular disease and systemic bacterial infection. Development of functional nanoparticles can be encumbered by unanticipated material properties and biological events, which can affect nanoparticle effectiveness in complex, physiologically relevant systems1,2,3. Despite the advances in bottom-up nanoengineering and surface chemistry, reductionist functionalization approaches remain inadequate in replicating the complex interfaces present in nature and cannot avoid exposure of foreign materials. Here we report on the preparation of polymeric nanoparticles enclosed in the plasma membrane of human platelets, which are a unique population of cellular fragments that adhere to a variety of disease-relevant substrates4,5,6,7. The resulting nanoparticles possess a right-side-out unilamellar membrane coating functionalized with immunomodulatory and adhesion antigens associated with platelets. Compared to uncoated particles, the platelet membrane-cloaked nanoparticles have reduced cellular uptake by macrophage-like cells and lack particle-induced complement activation in autologous human plasma. The cloaked nanoparticles also display platelet-mimicking properties such as selective adhesion to damaged human and rodent vasculatures as well as enhanced binding to platelet-adhering pathogens. In an experimental rat model of coronary restenosis and a mouse model of systemic bacterial infection, docetaxel and vancomycin, respectively, show enhanced therapeutic efficacy when delivered by the platelet-mimetic nanoparticles. The multifaceted biointerfacing enabled by the platelet membrane cloaking method provides a new approach in developing functional nanoparticles for disease-targeted delivery.

The unique structural features and stealth properties of a recently developed red blood cell membrane-cloaked nanoparticle (RBC-NP) platform raise curiosity over the interfacial interactions between natural cellular membranes and polymeric nanoparticle substrates. Herein, several interfacial aspects of the RBC-NPs are examined, including completeness of membrane coverage, membrane sidedness upon coating, and the effects of polymeric particles' surface charge and surface curvature on the membrane cloaking process. The study shows that RBC membranes completely cover negatively charged polymeric nanoparticles in a right-side-out manner and enhance the particles' colloidal stability. The membrane cloaking process is applicable to particle substrates with a diameter ranging from 65 to 340 nm. Additionally, the study reveals that both surface glycans on RBC membranes and the substrate properties play a significant role in driving and directing the membrane–particle assembly. These findings further the understanding of the dynamics between cellular membranes and nanoscale substrates and provide valuable information toward future development and characterization of cellular membrane-cloaked nanodevices.

We investigate the 'marker-of-self' functionalization of nanoparticles through coating of natural RBC membranes. The membrane translocation approach is shown to be highly efficient and bestows nanoparticles with correctly oriented and functional immunomodulatory proteins such as CD47 at equivalent density to natural RBCs.

RBC membrane-cloaked polymeric nanoparticles represent an emerging nanocarrier platform with extended circulation in vivo. A lipid-insertion method is employed to functionalize these nanoparticles without the need for direct chemical conjugation. Insertion of both folate and the nucleolin-targeting aptamer AS1411 shows receptor-specific targeting against model cancer cell lines.