Myelodysplastic syndromes are a diverse and common group of chronic hematologic cancers. The identification of new genetic lesions could facilitate new diagnostic and therapeutic strategies.

Stem cell transplantation is used widely in the management of a range of diseases of the hemopoietic system. Patients are immunosuppressed profoundly in the early posttransplant period, and reactivation of cytomegalovirus (CMV) remains a significant cause of morbidity and mortality. Adoptive transfer of donor-derived CMV-specific CD8+ T cell clones has been shown to reduce the rate of viral reactivation; however, the complexity of this approach severely limits its clinical application. We have purified CMV-specific CD8+ T cells from the blood of stem cell transplant donors using staining with HLA–peptide tetramers followed by selection with magnetic beads. CMV-specific CD8+ cells were infused directly into nine patients within 4 h of selection. Median cell dosage was 8.6 × 103/kg with a purity of 98% of all T cells. CMV-specific CD8+ T cells became detectable in all patients within 10 d of infusion, and TCR clonotype analysis showed persistence of infused cells in two patients studied. CMV viremia was reduced in every case and eight patients cleared the infection, including one patient who had a prolonged history of CMV infection that was refractory to antiviral therapy. This novel approach to adoptive transfer has considerable potential for antigen-specific T cell therapy.

In a previous study, we identified somatic mutations of SF3B1, a gene encoding a core component of RNA splicing machinery, in patients with myelodysplastic syndrome (MDS). Here, we define the clinical significance of these mutations in MDS and myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms (MDS/MPN). The coding exons of SF3B1 were screened using massively parallel pyrosequencing in patients with MDS, MDS/MPN, or acute myeloid leukemia (AML) evolving from MDS. Somatic mutations of SF3B1 were found in 150 of 533 (28.1%) patients with MDS, 16 of 83 (19.3%) with MDS/MPN, and 2 of 38 (5.3%) with AML. There was a significant association of SF3B1 mutations with the presence of ring sideroblasts (P < .001) and of mutant allele burden with their proportion (P = .002). The mutant gene had a positive predictive value for ring sideroblasts of 97.7% (95% confidence interval, 93.5%-99.5%). In multivariate analysis including established risk factors, SF3B1 mutations were found to be independently associated with better overall survival (hazard ratio = 0.15, P = .025) and lower risk of evolution into AML (hazard ratio = 0.33, P = .049). The close association between SF3B1 mutations and disease phenotype with ring sideroblasts across MDS and MDS/MPN is consistent with a causal relationship. Furthermore, SF3B1 mutations are independent predictors of favorable clinical outcome, and their incorporation into stratification systems might improve risk assessment in MDS.

Risk stratification is critical in the care of patients with myelodysplastic syndromes (MDS). Approximately 10% have a complex karyotype (CK), defined as more than two cytogenetic abnormalities, which is a highly adverse prognostic marker. However, CK-MDS can carry a wide range of chromosomal abnormalities and somatic mutations. To refine risk stratification of CK-MDS patients, we examined data from 359 CK-MDS patients shared by the International Working Group for MDS. Mutations were underrepresented with the exception of TP53 mutations, identified in 55% of patients. TP53 mutated patients had even fewer co-mutated genes but were enriched for the del(5q) chromosomal abnormality (p < 0.005), monosomal karyotype (p < 0.001), and high complexity, defined as more than 4 cytogenetic abnormalities (p < 0.001). Monosomal karyotype, high complexity, and TP53 mutation were individually associated with shorter overall survival, but monosomal status was not significant in a multivariable model. Multivariable survival modeling identified severe anemia (hemoglobin < 8.0 g/dL), NRAS mutation, SF3B1 mutation, TP53 mutation, elevated blast percentage (>10%), abnormal 3q, abnormal 9, and monosomy 7 as having the greatest survival risk. The poor risk associated with CK-MDS is driven by its association with prognostically adverse TP53 mutations and can be refined by considering clinical and karyotype features.