Available incidence data for invasive salmonella disease in sub-Saharan Africa are scarce. Standardised, multicountry data are required to better understand the nature and burden of disease in Africa. We aimed to measure the adjusted incidence estimates of typhoid fever and invasive non-typhoidal salmonella (iNTS) disease in sub-Saharan Africa, and the antimicrobial susceptibility profiles of the causative agents.We established a systematic, standardised surveillance of blood culture-based febrile illness in 13 African sentinel sites with previous reports of typhoid fever: Burkina Faso (two sites), Ethiopia, Ghana, Guinea-Bissau, Kenya, Madagascar (two sites), Senegal, South Africa, Sudan, and Tanzania (two sites). We used census data and health-care records to define study catchment areas and populations. Eligible participants were either inpatients or outpatients who resided within the catchment area and presented with tympanic (≥38·0°C) or axillary temperature (≥37·5°C). Inpatients with a reported history of fever for 72 h or longer were excluded. We also implemented a health-care utilisation survey in a sample of households randomly selected from each study area to investigate health-seeking behaviour in cases of self-reported fever lasting less than 3 days. Typhoid fever and iNTS disease incidences were corrected for health-care-seeking behaviour and recruitment.Between March 1, 2010, and Jan 31, 2014, 135 Salmonella enterica serotype Typhi (S Typhi) and 94 iNTS isolates were cultured from the blood of 13 431 febrile patients. Salmonella spp accounted for 33% or more of all bacterial pathogens at nine sites. The adjusted incidence rate (AIR) of S Typhi per 100 000 person-years of observation ranged from 0 (95% CI 0-0) in Sudan to 383 (274-535) at one site in Burkina Faso; the AIR of iNTS ranged from 0 in Sudan, Ethiopia, Madagascar (Isotry site), and South Africa to 237 (178-316) at the second site in Burkina Faso. The AIR of iNTS and typhoid fever in individuals younger than 15 years old was typically higher than in those aged 15 years or older. Multidrug-resistant S Typhi was isolated in Ghana, Kenya, and Tanzania (both sites combined), and multidrug-resistant iNTS was isolated in Burkina Faso (both sites combined), Ghana, Kenya, and Guinea-Bissau.Typhoid fever and iNTS disease are major causes of invasive bacterial febrile illness in the sampled locations, most commonly affecting children in both low and high population density settings. The development of iNTS vaccines and the introduction of S Typhi conjugate vaccines should be considered for high-incidence settings, such as those identified in this study.Bill & Melinda Gates Foundation.

ABSTRACT Colistin is extensively used in animal production in many low- and middle-income countries. There is a need to develop methodologies to benchmark and monitor changes in resistance in commensal bacterial populations in farms. We aimed to evaluate the performance of a broth microdilution method based on culturing a pooled Escherichia coli suspension (30-50 organisms) from each sample. In order to confirm the biological basis and sensitivity of the method, we prepared 16 standard suspensions containing variable ratios of colistin-susceptible and mcr -1 encoded colistin-resistant E. coli which were grown in 2mg/L colistin. The optical density (OD 600nm ) readings over time were used to generate a growth curve, and were adjusted to the values obtained in the absence of colistin. The median limit of detection of the method was 1 colistin-resistant in 10 4 susceptible colonies [1 st - 3 rd quartile, 1:10 2 – 1:10 5 ]. We applied this method to 108 pooled faecal samples from 36 chicken flocks in the Mekong Delta (Vietnam) over the production cycle. The correlation between this method and the prevalence of colistin resistance in individual colonies harvested from field samples, determined by the Minimum Inhibitory Concentration (MIC), was established. The overall prevalence of colistin resistance at sample and isolate level was 38.9% and 19.4%, respectively. Increased colistin resistance was associated with recent (2 weeks) use of colistin and other, non-colistin antimicrobials (OR=3.67 and OR=1.84, respectively). Our method is a sensitive and affordable approach to monitor changes in colistin resistance in pooled E. coli populations from faecal samples over time. IMPORTANCE Colistin (polymyxin E) is an antimicrobial with poor solubility properties, and therefore broth microdilution is the only appropriate method for testing colistin resistance. However, estimating colistin resistance in commensal mixed Escherichia coli populations is laborious since it requires individual colony isolation, identification and susceptibility testing. We developed a growth-based microdilution method suitable for pooled faecal samples. We validated the method by comparing it with results from individual MIC testing of 909 E. coli isolates. We used the method to investigate phenotypic colistin resistance in 108 pooled faecal samples from 36 healthy chicken flocks, each sampled three times over the production cycle. A higher level of resistance was seen in flocks recently supplemented with colistin in drinking water, although the observed generated resistance was short-lived. Our method is affordable, and may potentially be integrated into surveillance systems aiming at estimating the prevalence of resistance at colony level in flocks/herds. Furthermore, it may also be adapted to other complex biological systems, such as farms and abattoirs.

Recent interest in the diverse ecosystem of bacteria, fungi, parasites, and viruses that make up the skin microbiome has led to several studies investigating the microbiome in healthy skin and in a variety of dermatological conditions. An imbalance of the normal skin flora can cause some skin diseases, and current culture techniques are often unable to detect a microorganism to further our understanding of the clinical–microbiological correlates of disease and dysbiosis. Atopic dermatitis and rosacea are presentations that GPs often manage that may have an infective or microbiological component and can be challenging to treat. We aim to discuss the implications of the skin microbiome including the impact of dysbiosis on conditions such as these. We will also discuss some clinical pearls for initial and future directions of the management of conditions such as atopic dermatitis, rosacea, and hidradenitis suppurativa. Further research using culture-independent techniques is needed for conditions involving microbial dysbiosis to advance our knowledge of skin disease pathophysiology and guide future management.