Bacillus cereus is an opportunistic pathogen causing food poisoning manifested by diarrhoeal or emetic syndromes1. It is closely related to the animal and human pathogen Bacillus anthracis and the insect pathogen Bacillus thuringiensis, the former being used as a biological weapon and the latter as a pesticide. B. anthracis and B. thuringiensis are readily distinguished from B. cereus by the presence of plasmid-borne specific toxins (B. anthracis and B. thuringiensis) and capsule (B. anthracis). But phylogenetic studies based on the analysis of chromosomal genes bring controversial results, and it is unclear whether B. cereus, B. anthracis and B. thuringiensis are varieties of the same species2 or different species3,4. Here we report the sequencing and analysis of the type strain B. cereus ATCC 14579. The complete genome sequence of B. cereus ATCC 14579 together with the gapped genome of B. anthracis A20125 enables us to perform comparative analysis, and hence to identify the genes that are conserved between B. cereus and B. anthracis, and the genes that are unique for each species. We use the former to clarify the phylogeny of the cereus group, and the latter to determine plasmid-independent species-specific markers.

Cadmium resistance specified by the cadA determinant of Staphylococcus aureus plasmid pI258 results from the functioning of a cadmium-efflux system. In the nucleotide sequence of the DNA fragment containing the cadA determinant, two open reading frames were identified. The larger one, corresponding to a predicted polypeptide of 727 amino acid residues, is necessary and sufficient for expression of cadmium resistance. Comparison of the CadA amino acid sequence with known protein sequences suggested that CadA is a member of the E1E2 cation-translocating ATPases, similar to the K+-uptake ATPases of Gram-positive and Gram-negative bacteria. The sequence homology is lower but significant with other E1E2-type ATPases, including the H+-efflux ATPases of eukaryotic microbes and the Ca2+- and Na+/K+-ATPases of animals. A frame-shift mutation in the middle of the gene destroys the Cd2+-resistance phenotype. A detailed model for the putative CadA ATPase based on homologies to other E1E2 ATPases is presented and discussed.