Global energy balance in mammals is controlled by the actions of circulating hormones that coordinate fuel production and utilization in metabolically active tissues. Bone-derived osteocalcin, in its undercarboxylated, hormonal form, regulates fat deposition and is a potent insulin secretagogue. Here, we show that insulin receptor (IR) signaling in osteoblasts controls osteoblast development and osteocalcin expression by suppressing the Runx2 inhibitor Twist2. Mice lacking IR in osteoblasts have low circulating undercarboxylated osteocalcin and reduced bone acquisition due to decreased bone formation and deficient numbers of osteoblasts. With age, these mice develop marked peripheral adiposity and hyperglycemia accompanied by severe glucose intolerance and insulin resistance. The metabolic abnormalities in these mice are improved by infusion of undercarboxylated osteocalcin. These results indicate the existence of a bone-pancreas endocrine loop through which insulin signaling in the osteoblast ensures osteoblast differentiation and stimulates osteocalcin production, which in turn regulates insulin sensitivity and pancreatic insulin secretion.

Skeletal development and turnover occur in close spatial and temporal association with angiogenesis. Osteoblasts are ideally situated in bone to sense oxygen tension and respond to hypoxia by activating the hypoxia-inducible factor α (HIFα) pathway. Here we provide evidence that HIFα promotes angiogenesis and osteogenesis by elevating VEGF levels in osteoblasts. Mice overexpressing HIFα in osteoblasts through selective deletion of the von Hippel–Lindau gene (Vhl) expressed high levels of Vegf and developed extremely dense, heavily vascularized long bones. By contrast, mice lacking Hif1a in osteoblasts had the reverse skeletal phenotype of that of the Vhl mutants: long bones were significantly thinner and less vascularized than those of controls. Loss of Vhl in osteoblasts increased endothelial sprouting from the embryonic metatarsals in vitro but had little effect on osteoblast function in the absence of blood vessels. Mice lacking both Vhl and Hif1a had a bone phenotype intermediate between those of the single mutants, suggesting overlapping functions of HIFs in bone. These studies suggest that activation of the HIFα pathway in developing bone increases bone modeling events through cell-nonautonomous mechanisms to coordinate the timing, direction, and degree of new blood vessel formation in bone.

The hypoxia-inducible factor-1α (HIF-1α) pathway is the central regulator of adaptive responses to low oxygen availability and is required for normal skeletal development. Here, we demonstrate that the HIF-1α pathway is activated during bone repair and can be manipulated genetically and pharmacologically to improve skeletal healing. Mice lacking pVHL in osteoblasts with constitutive HIF-1α activation in osteoblasts had markedly increased vascularity and produced more bone in response to distraction osteogenesis, whereas mice lacking HIF-1 α in osteoblasts had impaired angiogenesis and bone healing. The increased vascularity and bone regeneration in the pVHL mutants were VEGF dependent and eliminated by concomitant administration of VEGF receptor antibodies. Small-molecule inhibitors of HIF prolyl hydroxylation stabilized HIF/VEGF production and increased angiogenesis in vitro . One of these molecules (DFO) administered in vivo into the distraction gap increased angiogenesis and markedly improved bone regeneration. These results identify the HIF-1α pathway as a critical mediator of neoangiogenesis required for skeletal regeneration and suggest the application of HIF activators as therapies to improve bone healing.