Human B-cell differentiation factor (BCDF) was purified to homogeneity by sequential filtration and chromatography of culture supernatants from TCL-Na1 cells on an AcA34 gel column and then on a Mono P column with fast protein liquid chromatography and reversed-phase HPLC. A 5300-fold enrichment in specific activity of BCDF with about 25% recovery was attained. The homogeneity of purified BCDF was evidenced by the following: (i) the specific activity was 1.7 X 10(7) units/mg of protein, (ii) only two bands, Mr 19,000 and 21,000, were identified by NaDodSO4/PAGE under reduced as well as nonreduced conditions, and (iii) BCDF activity was recovered from the gel after NaDodSO4/PAGE in the fractions corresponding to protein bands of Mr 19,000 or 21,000. Purified BCDF induced Ig secretion in Epstein-Barr virus-transformed cell lines; as little as 3 pM gave 50% of the maximum reaction achieved by 30-80 pM BCDF. Purified BCDF induced Ig production in activated B cells without any effect on cell growth. Purified BCDF did not show any activity of interleukin 1 or 2, B-cell stimulatory factor (BSF)p-1, B-cell growth factor II (BCGF-II), or interferon. Since BCDF was isolated and characterized as described, we propose that the BCDF that induces the final differentiation of B cells into high-rate Ig-secreting cells be designated BSFp-2.

Besides their microbicidal functions, human β-defensins (hBD) and LL-37 activate different immune and inflammatory cells, and their expression is enhanced in inflamed skin and cutaneous wound sites. To protect against pathogens, the skin produces antimicrobial peptides including hBDs and LL-37. Therefore, the aim of our study was to investigate whether hBDs participate in cutaneous inflammation and wound healing by inducing keratinocyte migration, proliferation, and production of proinflammatory cytokines/chemokines. We found that hBD-2, -3, and -4 but not hBD-1 stimulated human keratinocytes to increase their gene expression and protein production of IL-6, IL-10, IP-10, monocyte chemoattractant protein-1, macrophage inflammatory protein-3α, and RANTES. This stimulatory effect was markedly suppressed by pertussis toxin and U-73122, inhibitors for G protein and phospholipase C, respectively. We also demonstrated that hBDs elicited intracellular Ca2+ mobilization, and increased keratinocyte migration, and proliferation. In addition, these peptides induced phosphorylation of EGFR, signal transducer and activator of transcription (STAT)1, and STAT3, which are intracellular signaling molecules involved in keratinocyte migration and proliferation. In our study, inhibition of these molecules significantly reduced hBD-mediated keratinocyte migration and proliferation. In conclusion, this study provides evidence that human antimicrobial peptides may be involved in skin immunity through stimulating cytokine/chemokine production, and participate in wound healing by promoting keratinocyte migration and proliferation. Besides their microbicidal functions, human β-defensins (hBD) and LL-37 activate different immune and inflammatory cells, and their expression is enhanced in inflamed skin and cutaneous wound sites. To protect against pathogens, the skin produces antimicrobial peptides including hBDs and LL-37. Therefore, the aim of our study was to investigate whether hBDs participate in cutaneous inflammation and wound healing by inducing keratinocyte migration, proliferation, and production of proinflammatory cytokines/chemokines. We found that hBD-2, -3, and -4 but not hBD-1 stimulated human keratinocytes to increase their gene expression and protein production of IL-6, IL-10, IP-10, monocyte chemoattractant protein-1, macrophage inflammatory protein-3α, and RANTES. This stimulatory effect was markedly suppressed by pertussis toxin and U-73122, inhibitors for G protein and phospholipase C, respectively. We also demonstrated that hBDs elicited intracellular Ca2+ mobilization, and increased keratinocyte migration, and proliferation. In addition, these peptides induced phosphorylation of EGFR, signal transducer and activator of transcription (STAT)1, and STAT3, which are intracellular signaling molecules involved in keratinocyte migration and proliferation. In our study, inhibition of these molecules significantly reduced hBD-mediated keratinocyte migration and proliferation. In conclusion, this study provides evidence that human antimicrobial peptides may be involved in skin immunity through stimulating cytokine/chemokine production, and participate in wound healing by promoting keratinocyte migration and proliferation. cell-counting kit-8 human β-defensin pertussis toxin messenger RNA phosphate-buffered saline phospholipase C standard deviation small-interfering RNA signal transducer and activator of transcription transforming growth factor

The partial amino acid sequence of the NH2 terminus of a factor named human B-cell differentiation factor or B-cell stimulatory factor 2 (BSF-2) has been determined. Antibodies raised against the synthetic peptide corresponding to residues 1-13 of the NH2-terminal sequence specifically react with BSF-2 generated by a T-cell line and by phytohemagglutinin-stimulated normal T cells. Furthermore, the antipeptide antibodies react with a BSF-2-like factor produced by cardiac myxoma as well as uterine cervical carcinoma cells. The results show that BSF-2 functions in vivo as well and suggest that the constitutive production of BSF-2 may be involved in autoantibody production, since patients with cardiac myxoma and uterine carcinoma showed autoantibody production.

Mas-related G protein-coupled receptor b2 (Mrgprb2) binding to its cationic endogenous and exogenous ligands induces mast cell degranulation and promotes inflammation in mice. However, the physiological roles of its human homologue MRGPRX2 remain unclear. Here we aimed to elucidate the mechanisms by which MRGPRX2 regulates vascular permeability, and generated MRGPRX2 knock-in (MRGPRX2-KI) and Mrgprb2 knockout (Mrgprb2-KO) mice. Substance P (SP) and ciprofloxacin strongly degranulated MRGPRX2-KI peritoneal mast cells (PMCs) better than WT PMCs, whereas Dermatophagoides pteronyssinus (Der p) extract and phenol-soluble modulin α3 (PSMα3) did not degranulate PMCs. SP-stimulated MRGPRX2-KI PMCs released large amounts of histamine and mast cell protease 4 (MCPT4) chymase. Der p extract, PSMα3, and MCPT4, but not histamine, induced SP release from dorsal root ganglion (DRG) cells. However, this effect of Der p extract/PSMα3 was suppressed by a transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1) antagonist. SP-, ciprofloxacin-, Der p extract-, PSMα3-, and MCPT4-induced vascular permeability was highest in MRGPRX2-KI mice, which depended on SP. In addition, SP-, ciprofloxacin- and PSMα3-induced MRGPRX2-dependent vascular hyperpermeability was suppressed by antihistamine and chymase inhibitor. TRPV1 antagonist also inhibited PSMα3-induced MRGPRX2-dependent vascular hyperpermeability. Both Mrgprb2-KO and MRGPRX2-KI did not influence the histamine-induced murine vascular hyperpermeability. Overall, our results suggest that neuronal SP induces MRGPRX2-dependent mast cell degranulation, releasing histamine and chymase, which promote vascular hyperpermeability directly or indirectly via DRG cell activation. Importantly, the worsening cycle (MRGPRX2 → mast cell degranulation → chymase → DRG activation → SP → MRGPRX2) seems to play an important role in human MRGPRX2-depdendent inflammation.