Oncogenic TACC-tics Human cancers exhibit many types of genomic rearrangements—including some that juxtapose sequences from two unrelated genes—thereby creating fusion proteins with oncogenic activity. Functional analysis of these fusion genes can provide mechanistic insights into tumorigenesis and potentially lead to effective drugs, as famously illustrated by the BCR-ABL gene in chronic myelogenous leukemia. Singh et al. (p. 1231 , published online 26 July) identify and characterize a fusion gene present in 3% of human glioblastomas, a deadly brain cancer. In the resultant fusion protein, the tyrosine kinase region of the fibroblast growth factor receptor (FGFR) is joined to a domain from a transforming acidic coiled-coil (TACC) protein. The TACC-FGFR protein is oncogenic, shows unregulated kinase activity, localizes to the mitotic spindle, and disrupts chromosome segregation. In mice, FGFR inhibitors slowed the growth of tumors driven by the TACC-FGFR gene, suggesting that a subset of glioblastoma patients may benefit from these types of drugs.

Anna Lasorella, Raul Rabadan, Antonio Iavarone and colleagues report an integrated analysis of genomic alterations in glioblastoma. They identify and functionally validate several new driver events, including loss-of-function mutations in CTNND2 and recurrent EGFR fusions. Glioblastoma is one of the most challenging forms of cancer to treat. Here we describe a computational platform that integrates the analysis of copy number variations and somatic mutations and unravels the landscape of in-frame gene fusions in glioblastoma. We found mutations with loss of heterozygosity in LZTR1, encoding an adaptor of CUL3-containing E3 ligase complexes. Mutations and deletions disrupt LZTR1 function, which restrains the self renewal and growth of glioma spheres that retain stem cell features. Loss-of-function mutations in CTNND2 target a neural-specific gene and are associated with the transformation of glioma cells along the very aggressive mesenchymal phenotype. We also report recurrent translocations that fuse the coding sequence of EGFR to several partners, with EGFR-SEPT14 being the most frequent functional gene fusion in human glioblastoma. EGFR-SEPT14 fusions activate STAT3 signaling and confer mitogen independence and sensitivity to EGFR inhibition. These results provide insights into the pathogenesis of glioblastoma and highlight new targets for therapeutic intervention.

The nuclease-based gene editing tools are rapidly transforming capabilities for altering the genome of cells and organisms with great precision and in high throughput studies. A major limitation in application of precise gene editing lies in lack of sensitive and fast methods to detect and characterize the induced DNA changes. Precise gene editing induces double-stranded DNA breaks that are repaired by error-prone non-homologous end joining leading to introduction of insertions and deletions (indels) at the target site. These indels are often small and difficult and laborious to detect by traditional methods. Here we present a method for fast, sensitive and simple indel detection that accurately defines indel sizes down to ±1 bp. The method coined IDAA for Indel Detection by Amplicon Analysis is based on tri-primer amplicon labelling and DNA capillary electrophoresis detection, and IDAA is amenable for high throughput analysis.