Thirty asymptomatic men and 19 asymptomatic women were monitored during one night's sleep to determine the incidence of breathing abnormalities and oxygen desaturation in normal subjects. Twenty men accounted for 264 episodes of nocturnal oxygen desaturation or abnormal breathing. Women never experienced oxygen desaturation, and only three had a total of nine episodes of apnea. These sex differences were highly significant (P less than 0.003). In men, increasing age and obesity correlated positively with the incidence of nocturnal oxygen desaturation and abnormal breathing. Four asymptomatic men weighing more than 90 kg dropped their saturation to very low levels (68 to 72 per cent). Abnormal breathing and oxygen desaturation during sleep in subjects with chronic obstructive lung disease of the syndrome of hypersomnolence with periodic breathing may represent the superimposition of smoking or obesity on a normal tendency to snoring and oxygen desaturation in men.

Bat Genomes Bats are of great interest because of their ability to fly and as hosts for infectious disease. Zhang et al. (p. 456 , published online 20 December) sequenced the genomes of two distantly related bat species, David's Myotis and Black flying fox. Analysis of the two genomes revealed likely changes that accompanied the evolution of bats, including selection for increased expression of genes involved in the oxidative phosphorylation pathway needed to generate the energy required for flight. Furthermore, while some immune genes have been lost, others are under positive selection, which may potentially explain bats' status as viral reservoirs.

Bats harbor many emerging and reemerging viruses, several of which are highly pathogenic in other mammals but cause no clinical signs of disease in bats. To determine the role of interferons (IFNs) in the ability of bats to coexist with viruses, we sequenced the type I IFN locus of the Australian black flying fox, Pteropus alecto, providing what is, to our knowledge, the first gene map of the IFN region of any bat species. Our results reveal a highly contracted type I IFN family consisting of only 10 IFNs, including three functional IFN-α loci. Furthermore, the three IFN-α genes are constitutively expressed in unstimulated bat tissues and cells and their expression is unaffected by viral infection. Constitutively expressed IFN-α results in the induction of a subset of IFN-stimulated genes associated with antiviral activity and resistance to DNA damage, providing evidence for a unique IFN system that may be linked to the ability of bats to coexist with viruses.

The ability to distinguish between viable and non-viable protozoan parasites is central to improved human and animal health management. While conceptually simple, methods to differentiate cell viability in situ remain challenging. Amoebic gill disease, caused by Neoparamoeba perurans is a parasitic disease impacting Atlantic salmon aquaculture globally. Although commercial freshwater treatments alleviate AGD, viable amoebae remain on gills or in used treatment water. Existing PCR-based assays are able to quantify N. perurans abundance but cannot discriminate amoeba viability. We investigated the use of propidium monoazide (PMA) application, prior to real-time PCR, to distinguish between alive and dead cells. We demonstrate that 200 μM PMA can significantly reduce amplification from non-viable (isopropanol treated) cultured amoebae across at least three logs of cell concentrations. Using a serial dilution of viable and non-viable cells, we show that non-PMA PCR amplifies both viable and non-viable amoebae, while PMA exposure suppresses (but does not completely inhibit) amplification from non-viable amoebae. The effect of freshwater treatment on N. perurans viability was assessed using the PMA-PCR. Following PMA exposure, amplification from freshwater treated amoebae was reduced by approximately 94-97 %. Taken together this study demonstrates that PMA combined with traditional real-time PCR can estimate amoeba viability.

ABSTRACT Nodular gill disease (NGD) is a serious proliferative gill condition that affects farmed salmonids, particularly in Europe. While the cause of NGD remains unknown (and maybe multifactorial), various amoebae are often isolated from the gills of affected fish and can in some cases be seen associated with lesions by histopathology. The present study aimed to quantify the abundance of different amoeba species directly from the gills of rainbow trout affected by NGD and healthy controls. An 18S rRNA amplicon metagenomic approach was employed to profile the diversity and abundance of micro‐eukaryotes (including amoebae) while suppressing the amplification of host DNA using a salmonid‐specific C3 spacer blocking primer. The 18S rRNA metagenomics approach identified a diversity of micro‐eukaryotes on the gills of rainbow trout, including the phylum's Amoebozoa , Diatomea , Platyhelminthes and Ciliophora . Rainbow trout clinically affected by NGD had a significantly higher abundance of a specific sequence (zOTU2) classified as Vannella sp. compared to healthy controls. A quantitative PCR assay was then developed and validated which accurately quantified the abundance of this Vannella sp. sequence from a NGD outbreak in a Swiss rainbow trout farm. Additional PCR and Sanger sequencing analysis of the zOTU2 sequence demonstrated that this sequence is most likely derived from Vannella mustalahtiana . Our study highlights the potential role of Vannella mustalahtiana in NGD in Switzerland and further describes a specific and validated diagnostic PCR assay for accurate detection of this Vannella species.