The cytokine oncostatin M drives intestinal inflammation in mice, and its abundance in the intestine of patients with inflammatory bowel disease predicts response to tumor necrosis factor–neutralizing therapy. Inflammatory bowel diseases (IBD), including Crohn's disease (CD) and ulcerative colitis (UC), are complex chronic inflammatory conditions of the gastrointestinal tract that are driven by perturbed cytokine pathways. Anti-tumor necrosis factor-α (TNF) antibodies are mainstay therapies for IBD. However, up to 40% of patients are nonresponsive to anti-TNF agents, which makes the identification of alternative therapeutic targets a priority. Here we show that, relative to healthy controls, inflamed intestinal tissues from patients with IBD express high amounts of the cytokine oncostatin M (OSM) and its receptor (OSMR), which correlate closely with histopathological disease severity. The OSMR is expressed in nonhematopoietic, nonepithelial intestinal stromal cells, which respond to OSM by producing various proinflammatory molecules, including interleukin (IL)-6, the leukocyte adhesion factor ICAM1, and chemokines that attract neutrophils, monocytes, and T cells. In an animal model of anti-TNF-resistant intestinal inflammation, genetic deletion or pharmacological blockade of OSM significantly attenuates colitis. Furthermore, according to an analysis of more than 200 patients with IBD, including two cohorts from phase 3 clinical trials of infliximab and golimumab, high pretreatment expression of OSM is strongly associated with failure of anti-TNF therapy. OSM is thus a potential biomarker and therapeutic target for IBD, and has particular relevance for anti-TNF-resistant patients.

Infiltration of breast tumors by tumor-infiltrating lymphocytes (TIL) has been associated with sensitivity to anthracycline-based chemotherapy. However, it is unclear whether this is true within the estrogen receptor-alpha (ER)-negative subset of breast tumors that frequently manifest high TIL levels. The association of TIL with short-term and long-term clinical response to anthracycline-based therapy was assessed in two independent ER-negative breast cancer cohorts in which patients were categorized as TIL-high or TIL-low. We defined an eight-gene lymphocyte mRNA expression signature (including CD19, CD3D, CD48, GZMB, LCK, MS4A1, PRF1, and SELL) and used unsupervised hierarchical clustering to examine the association between TIL and short-term response to neoadjuvant chemotherapy in a previously published cohort of ER-negative tumors (n = 113). We also examined the association between TIL and long-term chemotherapeutic efficacy in a second cohort of ER-negative tumors (n = 255) with longer than 6 years of median follow-up by using tissue microarrays and immunohistochemistry (IHC) for detection of CD3, CD8, CD4, CD20, and TIA-1. In patients with ER-negative tumors treated with neoadjuvant anthracycline-based chemotherapy, pathologic complete responses (pCRs) were achieved by 23 (74%) of 31 TIL-high patients and 25 (31%) of 80 TIL-low patients (odds ratio (OR), 6.33; 95% confidence interval (CI), 2.49 to 16.08; P < 0.0001). Multivariate logistic regression with standard clinicopathologic features demonstrated that only tumor size (P = 0.037) and TIL status (P = 0.001) were independent predictors of anthracycline response. In the second cohort, adjuvant anthracycline-based therapy was associated with increased disease-free survival (DFS) only in patients with high levels of intraepithelial CD3+ TIL (P = 0.0023). In contrast, outcomes after CMF treatment (cyclophosphamide, methotrexate, and fluorouracil) showed no association with CD3 status. In both cohorts, cytotoxic T-cells were the primary TIL subtype associated with anthracycline sensitivity. Finally, TIL significantly predicted anthracycline sensitivity for both the Her2-positive and triple-negative tumor phenotypes. ER-negative breast cancers with high levels of TIL have heightened sensitivity to anthracycline-based chemotherapy, as assessed by the immediate response to neoadjuvant therapy and long-term outcome following adjuvant therapy. Investigations of TIL-based predictive tests to identify patients likely to benefit from anthracycline-based treatments are warranted.

Interactions between commensal microbes and the immune system are tightly regulated and maintain intestinal homeostasis, but little is known about these interactions in humans. We investigated responses of human CD4

Innate lymphoid cells (ILCs) contribute to host defence and tissue repair but can induce immunopathology. Recent work has revealed tissue-specific roles for ILCs; however, the question of how a small population has large effects on immune homeostasis remains unclear. We identify two mechanisms that ILC3s utilise to exert their effects within intestinal tissue. ILC-driven colitis depends on production of granulocyte macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF), which recruits and maintains intestinal inflammatory monocytes. ILCs present in the intestine also enter and exit cryptopatches in a highly dynamic process. During colitis, ILC3s mobilize from cryptopatches, a process that can be inhibited by blocking GM-CSF, and mobilization precedes inflammatory foci elsewhere in the tissue. Together these data identify the IL-23R/GM-CSF axis within ILC3 as a key control point in the accumulation of innate effector cells in the intestine and in the spatio-temporal dynamics of ILCs in the intestinal inflammatory response.

 Multicellular cytokine networks orchestrate the onset and progression of intestinal inflammation and colitis-associated cancer (CAC). Interleukin 22 (IL-22), a member of the IL-10 superfamily, is known for its ability to promote epithelial cell recovery and repair. However, dysregulation of IL-22 can inadvertently fuel intestinal inflammation and tumorigenesis through mechanisms that are not completely understood. Here we show that IL-22, derived from group 3 innate lymphoid cells (ILC3), directly triggers oncostatin M (OSM) responsiveness in intestinal epithelial cells by activating the transcription factor STAT3 and upregulating OSM receptor (OSMR) expression. OSM, a member of the IL-6 cytokine family implicated in inflammatory bowel disease, collaborates with IL-22 to sustain STAT3 activation in epithelial cells, thereby orchestrating proinflammatory epithelial adaptations and immune cell chemotaxis to the intestine. Conditional deletion of OSMR in epithelial cells protects mice from both colitis and CAC. Furthermore, pharmacological blockade of OSM reduces the progression of established CAC. Our study reveals a novel mechanism by which OSM sustains intestinal inflammation and CAC and identifies the IL-22-OSM axis as a promising therapeutic target for intestinal inflammation and tumorigenesis.