Tuberous sclerosis (TSC) is a familial tumor syndrome due to mutations in TSC1 or TSC2, in which progression to malignancy is rare. Primary Tsc2(-/-) murine embryo fibroblast cultures display early senescence with overexpression of p21CIP1/WAF1 that is rescued by loss of TP53. Tsc2(-/-)TP53(-/-) cells, as well as tumors from Tsc2(+/-) mice, display an mTOR-activation signature with constitutive activation of S6K, which is reverted by treatment with rapamycin. Rapamycin also reverts a growth advantage of Tsc2(-/-)TP53(-/-) cells. Tsc1/Tsc2 does not bind directly to mTOR, however, nor does it directly influence mTOR kinase activity or cellular phosphatase activity. There is a marked reduction in Akt activation in Tsc2(-/-)TP53(-/-) and Tsc1(-/-) cells in response to serum and PDGF, along with a reduction in cell ruffling. PDGFRalpha and PDGFRbeta expression is markedly reduced in both the cell lines and Tsc mouse renal cystadenomas, and ectopic expression of PDGFRbeta in Tsc2-null cells restores Akt phosphorylation in response to serum, PDGF, EGF, and insulin. This activation of mTOR along with downregulation of PDGFR PI3K-Akt signaling in cells lacking Tsc1 or Tsc2 may explain why these genes are rarely involved in human cancer. This is in contrast to PTEN, which is a negative upstream regulator of this pathway.

Tuberous sclerosis (TSC) is a familial tumor syndrome due to mutations in TSC1 or TSC2, in which progression to malignancy is rare. Primary Tsc2–/– murine embryo fibroblast cultures display early senescence with overexpression of p21CIP1/WAF1 that is rescued by loss of TP53. Tsc2–/–TP53–/– cells, as well as tumors from Tsc2+/– mice, display an mTOR-activation signature with constitutive activation of S6K, which is reverted by treatment with rapamycin. Rapamycin also reverts a growth advantage of Tsc2–/–TP53–/– cells. Tsc1/Tsc2 does not bind directly to mTOR, however, nor does it directly influence mTOR kinase activity or cellular phosphatase activity. There is a marked reduction in Akt activation in Tsc2–/–TP53–/– and Tsc1–/– cells in response to serum and PDGF, along with a reduction in cell ruffling. PDGFRα and PDGFRβ expression is markedly reduced in both the cell lines and Tsc mouse renal cystadenomas, and ectopic expression of PDGFRβ in Tsc2-null cells restores Akt phosphorylation in response to serum, PDGF, EGF, and insulin. This activation of mTOR along with downregulation of PDGFR PI3K-Akt signaling in cells lacking Tsc1 or Tsc2 may explain why these genes are rarely involved in human cancer. This is in contrast to PTEN, which is a negative upstream regulator of this pathway.

Retroviral assembly and budding is driven by the Gag polyprotein and requires the host‐derived vacuolar protein sorting (vps) machinery. With the exception of human immunodeficiency virus (HIV)‐infected macrophages, current models predict that the vps machinery is recruited by Gag to viral budding sites at the cell surface. However, here we demonstrate that HIV Gag and murine leukemia virus (MLV) Gag also drive assembly intracellularly in cell types including 293 and HeLa cells, previously believed to exclusively support budding from the plasma membrane. Using live confocal microscopy in conjunction with electron microscopy of cells generating fluorescently labeled virions or virus‐like particles, we observed that these retroviruses utilize late endosomal membranes/multivesicular bodies as assembly sites, implying an endosome‐based pathway for viral egress. These data suggest that retroviruses can interact with the vps sorting machinery in a more traditional sense, directly linked to the mechanism by which cellular proteins are sorted into multivesicular endosomes.