Robin Gasser and his colleagues report the whole-genome sequence of Schistosoma haematobium. They include comparisons to the genome sequences of S. mansoni and S. japonicum, the two other species that cause schistosomiasis in humans. Schistosomiasis is a neglected tropical disease caused by blood flukes (genus Schistosoma; schistosomes) and affecting 200 million people worldwide1. No vaccines are available, and treatment relies on one drug, praziquantel2. Schistosoma haematobium has come into the spotlight as a major cause of urogenital disease, as an agent linked to bladder cancer1,3 and as a predisposing factor for HIV/AIDS4,5. The parasite is transmitted to humans from freshwater snails1. Worms dwell in blood vessels and release eggs that become embedded in the bladder wall to elicit chronic immune-mediated disease6 and induce squamous cell carcinoma7. Here we sequenced the 385-Mb genome of S. haematobium using Illumina-based technology at 74-fold coverage and compared it to sequences from related parasites8,9. We included genome annotation based on function, gene ontology, networking and pathway mapping. This genome now provides an unprecedented resource for many fundamental research areas and shows great promise for the design of new disease interventions.

The genome of the common roundworm Ascaris suum, a major parasite in many parts of the world, has now been sequenced. Analyses reveal many genes that encode peptidases linked to the penetration and degradation of host tissues, as well as molecules likely to modulate or evade host immune responses. The availability of this genome sequence should contribute towards the development of new therapeutic interventions against ascariasis and other nematode infections. Parasitic diseases have a devastating, long-term impact on human health, welfare and food production worldwide. More than two billion people are infected with geohelminths, including the roundworms Ascaris (common roundworm), Necator and Ancylostoma (hookworms), and Trichuris (whipworm), mainly in developing or impoverished nations of Asia, Africa and Latin America1. In humans, the diseases caused by these parasites result in about 135,000 deaths annually, with a global burden comparable with that of malaria or tuberculosis in disability-adjusted life years1. Ascaris alone infects around 1.2 billion people and, in children, causes nutritional deficiency, impaired physical and cognitive development and, in severe cases, death2. Ascaris also causes major production losses in pigs owing to reduced growth, failure to thrive and mortality2. The Ascaris–swine model makes it possible to study the parasite, its relationship with the host, and ascariasis at the molecular level. To enable such molecular studies, we report the 273 megabase draft genome of Ascaris suum and compare it with other nematode genomes. This genome has low repeat content (4.4%) and encodes about 18,500 protein-coding genes. Notably, the A. suum secretome (about 750 molecules) is rich in peptidases linked to the penetration and degradation of host tissues, and an assemblage of molecules likely to modulate or evade host immune responses. This genome provides a comprehensive resource to the scientific community and underpins the development of new and urgently needed interventions (drugs, vaccines and diagnostic tests) against ascariasis and other nematodiases.

The barber's pole worm, Haemonchus contortus, is one of the most economically important parasites of small ruminants worldwide. Although this parasite can be controlled using anthelmintic drugs, resistance against most drugs in common use has become a widespread problem. We provide a draft of the genome and the transcriptomes of all key developmental stages of H. contortus to support biological and biotechnological research areas of this and related parasites. The draft genome of H. contortus is 320 Mb in size and encodes 23,610 protein-coding genes. On a fundamental level, we elucidate transcriptional alterations taking place throughout the life cycle, characterize the parasite's gene silencing machinery, and explore molecules involved in development, reproduction, host-parasite interactions, immunity, and disease. The secretome of H. contortus is particularly rich in peptidases linked to blood-feeding activity and interactions with host tissues, and a diverse array of molecules is involved in complex immune responses. On an applied level, we predict drug targets and identify vaccine molecules. The draft genome and developmental transcriptome of H. contortus provide a major resource to the scientific community for a wide range of genomic, genetic, proteomic, metabolomic, evolutionary, biological, ecological, and epidemiological investigations, and a solid foundation for biotechnological outcomes, including new anthelmintics, vaccines and diagnostic tests. This first draft genome of any strongylid nematode paves the way for a rapid acceleration in our understanding of a wide range of socioeconomically important parasites of one of the largest nematode orders.

is an opportunistic bacterial pathogen linked with a range of human diseases. The objective of this study was to investigate the viable but nonculturable (VBNC) state of the bacterium. To induce the VBNC state,

The rumen microbiota of dairy cows plays a crucial role in fermenting fibrous material, essential for nutrient extraction and overall productivity, detoxification of anti-nutritional toxic compounds, synthesis of vital nutrients, and is essential for optimal animal health. This study investigated the impact of Lentilactobacillus-, Lactocaseibacillus-, and Lacticaseibacillus-based direct-fed microbial (DFM) supplementation on dairy cows’ faecal microbial composition and diversity. The study was carried out on a commercial dairy farm using 50 Holstein-Friesian cows randomly assigned into control (CON) and treatment (TRT) groups. Faecal samples were collected directly from the rectum every two months from September 2021 to January 2023. The bacterial 16S rRNA gene and fungal ITS-1 regions were amplified, sequenced, and analysed. Microbial diversity was assessed through alpha- and beta-diversity metrics. Linear discriminant analysis effect size (LEfSe) was performed to identify which taxa were driving the changes seen in the microbiota over time and treatment. Bacteroidaceae were the most prevalent bacterial family, followed by Lachnospiraceae and Muribaculaceae in both CON and TRT cows. Ascomycota, Basidiomycota, and Mucoromycota were the dominant three fungal phyla in the faeces of both CON and TRT cows. Bacterial genera Fructilactobacillus was abundant in the CON and Absicoccus in the TRT groups. Fungal taxa Chaetothryriales_incertae_sedis and Pseudomentella were absent in the faeces of TRT cows. Significant temporal and specific taxonomic differences were observed between the CON and TRT groups. The study’s findings underscore the dynamic nature of microbial communities and the importance of targeted dietary interventions. Further research is necessary to elucidate these microbial shifts, long-term impacts, and functional implications, aiming to optimise ruminant nutrition and enhance dairy cow performance.