California yellowtail (CYT), Seriola dorsalis, is a promising candidate for aquaculture due to its rapid growth and high-quality flesh, particularly in markets like Japan, Australia, China, and the United States. Soy protein has shown success as a replacement for marine protein sources in CYT diets, reducing fishmeal levels, though concerns about potential intestinal inflammation persist with the inclusion of solvent-extracted soybean meal. To address this, processing strategies like fractionation, enzymatic treatment, heat treatment, and microbial fermentation have been employed to mitigate the negative impacts of soybean meal on fish nutrition and immune systems. This study focuses on optimizing soybean meal inclusion levels by incorporating advanced soy variants into CYT diets. The eight-week feeding trial, conducted in a recirculation system, featured six diets with sequential inclusion levels (0, 50, 100%) of high protein low oligosaccharide soybean meal (Bright Day, Benson Hill, St Louis, MO) and enzyme-treated soybean meal (HP 300, Hamlet Protein Inc., Findlay, OH), replacing solvent-extracted soybean. The study compares these formulations against a soy-free animal protein-based diet. At the end of the trial, fish were sampled for growth performance, body proximate composition, intestinal morphology, and immune response from gut samples. Results showed consistent FCR ( P = 0.775), weight gain ( P = 0.242), and high survival rate (99.4 ± 0.5%) among dietary treatments ( P >0.05). Histological evaluations revealed no gut inflammation and gene expression analysis demonstrated no significant variations in immune, physiological, and digestive markers apn ( P = 0.687), mga ( P = 0.397), gpx1 (P = 0.279), atpase (P = 0.590), il1β ( P = 0.659). The study concludes that incorporating advanced soybean meal products, replacing up to 20% of fishmeal does not negatively affect CYT’s growth and intestinal health. This suggests that all three soy sources, contributing 35% of total protein (15.4 g 100 g -1 diet), can be included in practical diets without compromising CYT’s intestinal integrity or growth. These findings have positive implications for the commercial production of CYT and future research on the incorporation of plant-based proteins in aquaculture diets.

Previously, dietary humic substances (HSs) or protease complexes (PCs) in fingerling channel catfish Ictalurus punctatus (Rafinesque) have demonstrated potential for health enhancement. Two trials were conducted to elucidate an optimal HS or PC administration plan for growth and health promotion. The first feeding trial was conducted within a recirculating aquaculture system. Catfish fingerlings were fed a commercial control (28% protein) or supplemented diet (control + PC or HS). Diets were administered through four feeding regimens of either HS, or PC‐supplemented diet. After 60 days, continuous feeding of diets with HS or PC contributed to improved feed efficiency and weight gain of the fish. Similarly, catfish growth was enhanced following the application of HS or PC for the final 4 weeks. Serum lysozyme activity was relatively improved in catfish when a PC or HS diets were offered for 60 days. Feeding either of the supplements for the final 4 weeks improved skin lysozyme activity compared to the control group. In the second trial, catfish were fed either the commercial control diet, PC‐supplemented diet, or HS‐supplemented diet in an outdoor production environment for 60 days. Both HS and PC catfish groups had higher survival rates than the control group. Furthermore, growth performance was superior in additive‐fed groups. After HS or PC application, gut microbiota analysis from catfish fecal at two time points revealed significant variation in alpha diversity, community abundance, and beta diversity. However, the association of dietary HS or PC on improved survival, immunity, and gut microbiota modulations presents their importance as functional immunostimulants in catfish aquaculture.