Abstract Knockout of caspase-8, a cysteine protease that participates in the signaling for cell death by receptors of the TNF/nerve growth factor family, is lethal to mice in utero. To explore tissue-specific roles of this enzyme, we established its conditional knockout using the Cre/loxP recombination system. Consistent with its role in cell death induction, deletion of caspase-8 in hepatocytes protected them from Fas-induced caspase activation and death. However, application of the conditional knockout approach to investigate the cause of death of caspase-8 knockout embryos revealed that this enzyme also serves cellular functions that are nonapoptotic. Its deletion in endothelial cells resulted in degeneration of the yolk sac vasculature and embryonal death due to circulatory failure. Caspase-8 deletion in bone-marrow cells resulted in arrest of hemopoietic progenitor functioning, and in cells of the myelomonocytic lineage, its deletion led to arrest of differentiation into macrophages and to cell death. Thus, besides participating in cell death induction by receptors of the TNF/nerve growth factor family, caspase-8, apparently independently of these receptors, also mediates nonapoptotic and perhaps even antiapoptotic activities.

Abstract Background and aims Mitral Valve Prolapse (MVP) is a common valvular disorder associated with significant morbidity and mortality, with a strong genetic basis. This study aimed to identify a mutation in a family with MVP and to characterize the valve phenotype in LTBP2 knockout mice. Methods Exome sequencing and segregation analysis were performed on a large family with MVP. Two mouse strains were generated: a complete knockout (KO) of the LTBP2 gene and a knock-in (KI) of the human mutation. At 6 months, phenotyping was conducted using echocardiography, histology, eye optical coherence tomography, and qPCR analysis for TGFβ signaling targets (periostin/POSTN, RUNX2, and CTGF) in valve tissues. Results LTBP2 rs117800773 V1506M mutation exhibited segregation with MVP. LTBP2 KO mice had higher incidence of myxomatous changes by histology (7 of 9 of KO vs. 0 of 7 control animals, p=0.00186) and echocardiography (7 of 9 vs. 0 of 8, p=0.0011). LTBP2 Knock-in mice for the human mutation showed a significantly elevated myxomatous histological phenotype (8 of 8 vs. 0 of 9, p=0.00004) as well as by echocardiography (6 of 8 vs. 0 of 9, p=0.00123). KO mice demonstrated an increase in the depth of the anterior chamber as well as reduced visual acuity. LTBP2 KO mice demonstrated overexpression of both TGFβ signaling targets RUNX2 and periostin (P=0.0144 and P=0.001826, respectively). Conclusions We report a knockout mouse strain with an LTBP2 mutation, demonstrating a valve phenotype, alongside a family with a novel mutation linked to MVP