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Barbara Engelhardt
Author with expertise in Microarray Data Analysis and Gene Expression Profiling
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Understanding mechanisms underlying human gene expression variation with RNA sequencing

Joseph Pickrell et al.Mar 10, 2010
There is currently much interest in the understanding of genetic mechanisms that underlie variation at the gene expression level. Two groups reporting in this issue of Nature use RNA sequencing to study global gene expression in two contrasting populations. Pickrell et al. sequenced RNA from 69 lymphoblastoid cell lines derived from unrelated Nigerian individuals who have been extensively genotyped as part of the HapMap Project. By pooling data from all the individuals it was possible to identify many genetic determinants of variation in gene expression. Montgomery et al. characterize the mRNA fraction of RNA isolated from lymphoblastoid cell lines derived from 63 HapMap individuals of Caucasian origin. They obtain a fine-scale view of the transcriptome and identify genetic variants that affect alternative splicing. There is much interest in understanding the genetic mechanisms that underlie individual variations in gene expression. Here, RNA sequencing has been used to study gene expression in lymphoblastoid cell lines derived from Nigerian individuals for whom extensive genotype information is known. Numerous genetic determinants of variation in gene expression were identified, including variation in transcription, splicing and allele-specific expression. Understanding the genetic mechanisms underlying natural variation in gene expression is a central goal of both medical and evolutionary genetics, and studies of expression quantitative trait loci (eQTLs) have become an important tool for achieving this goal1. Although all eQTL studies so far have assayed messenger RNA levels using expression microarrays, recent advances in RNA sequencing enable the analysis of transcript variation at unprecedented resolution. We sequenced RNA from 69 lymphoblastoid cell lines derived from unrelated Nigerian individuals that have been extensively genotyped by the International HapMap Project2. By pooling data from all individuals, we generated a map of the transcriptional landscape of these cells, identifying extensive use of unannotated untranslated regions and more than 100 new putative protein-coding exons. Using the genotypes from the HapMap project, we identified more than a thousand genes at which genetic variation influences overall expression levels or splicing. We demonstrate that eQTLs near genes generally act by a mechanism involving allele-specific expression, and that variation that influences the inclusion of an exon is enriched within and near the consensus splice sites. Our results illustrate the power of high-throughput sequencing for the joint analysis of variation in transcription, splicing and allele-specific expression across individuals.
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Predicting genome-wide DNA methylation using methylation marks, genomic position, and DNA regulatory elements

Weiwei Zhang et al.Jan 23, 2015
Background: Recent assays for individual-specific genome-wide DNA methylation profiles have enabled epigenome-wide association studies to identify specific CpG sites associated with a phenotype. Computational prediction of CpG site-specific methylation levels is important, but current approaches tackle average methylation within a genomic locus and are often limited to specific genomic regions. Results: We characterize genome-wide DNA methylation patterns, and show that correlation among CpG sites decays rapidly, making predictions solely based on neighboring sites challenging. We built a random forest classifier to predict CpG site methylation levels using as features neighboring CpG site methylation levels and genomic distance, and co-localization with coding regions, CGIs, and regulatory elements from the ENCODE project, among others. Our approach achieves 91% -- 94% prediction accuracy of genome-wide methylation levels at single CpG site precision. The accuracy increases to 98% when restricted to CpG sites within CGIs. Our classifier outperforms state-of-the-art methylation classifiers and identifies features that contribute to prediction accuracy: neighboring CpG site methylation status, CpG island status, co-localized DNase I hypersensitive sites, and specific transcription factor binding sites were found to be most predictive of methylation levels. Conclusions: Our observations of DNA methylation patterns led us to develop a classifier to predict site-specific methylation levels that achieves the best DNA methylation predictive accuracy to date. Furthermore, our method identified genomic features that interact with DNA methylation, elucidating mechanisms involved in DNA methylation modification and regulation, and linking different epigenetic processes.
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