Ras proteins signal through direct interaction with a number of effector enzymes, including type I phosphoinositide (PI) 3-kinases. Although the ability of Ras to control PI 3-kinase has been well established in manipulated cell culture models, evidence for a role of the interaction of endogenous Ras with PI 3-kinase in normal and malignant cell growth in vivo has been lacking. Here we generate mice with mutations in the Pi3kca gene encoding the catalytic p110alpha isoform that block its interaction with Ras. Cells from these mice show proliferative defects and selective disruption of signaling from growth factors to PI 3-kinase. The mice display defective development of the lymphatic vasculature, resulting in perinatal appearance of chylous ascites. Most importantly, they are highly resistant to endogenous Ras oncogene-induced tumorigenesis. The interaction of Ras with p110alpha is thus required in vivo for certain normal growth factor signaling and for Ras-driven tumor formation.

Cytotoxic drug resistance is a major cause of cancer treatment failure. We report an RNA interference screen to identify genes influencing sensitivity of different cancer cell types to chemotherapeutic agents. A set of genes whose targeting leads to resistance to paclitaxel is identified, many of which are involved in the spindle assembly checkpoint. Silencing these genes attenuates paclitaxel-induced mitotic arrest and induces polyploidy in the absence of drug. We also identify a ceramide transport protein, COL4A3BP or CERT, whose downregulation sensitizes cancer cells to multiple cytotoxic agents, potentiating endoplasmic reticulum stress. COL4A3BP expression is increased in drug-resistant cell lines and in residual tumor following paclitaxel treatment of ovarian cancer, suggesting that it could be a target for chemotherapy-resistant cancers.

Abstract Image-based profiling has emerged as a powerful technology for various steps in basic biological and pharmaceutical discovery, but the community has lacked a large, public reference set of data from chemical and genetic perturbations. Here we present data generated by the Joint Undertaking for Morphological Profiling (JUMP)-Cell Painting Consortium, a collaboration between 10 pharmaceutical companies, six supporting technology companies, and two non-profit partners. When completed, the dataset will contain images and profiles from the Cell Painting assay for over 116,750 unique compounds, over-expression of 12,602 genes, and knockout of 7,975 genes using CRISPR-Cas9, all in human osteosarcoma cells (U2OS). The dataset is estimated to be 115 TB in size and capturing 1.6 billion cells and their single-cell profiles. File quality control and upload is underway and will be completed over the coming months at the Cell Painting Gallery: https://registry.opendata.aws/cellpainting-gallery . A portal to visualize a subset of the data is available at https://phenaid.ardigen.com/jumpcpexplorer/ .

Abstract Aberrant expression of MYC family members predicts poor clinical outcome in many human cancers. Oncogenic MYC profoundly alters metabolism and mediates an antioxidant response to maintain redox balance. Here we show that MYC induces massive lipid peroxidation upon depletion of cysteine, the rate-limiting amino acid for glutathione biosynthesis and sensitizes cells to ferroptosis, an oxidative, non-apoptotic and irondependent type of cell death. In MYCN -amplified childhood neuroblastoma, MYCN mediates resistance to ferroptosis by activating transsulfuration of methionine to cysteine. MYCN may contribute to spontaneous tumor regression in low-risk neuroblastomas by promoting ferroptosis in cells with epigenetically silenced cystathionine-beta-synthase, the rate-limiting enzyme for transsulfuration. We identified enzymes and antiporter proteins crucial to ferroptotic escape, providing multiple previously unknown sites that may be acted on therapeutically.

SUMMARY This study describes the identification and target deconvolution of novel small molecule inhibitors of oncogenic YAP1/TAZ activity with potent anti-tumor activity in vivo. A high-throughput screen (HTS) of 3.8 million compounds was conducted using a cellular YAP1/TAZ reporter assay. Target deconvolution studies identified the geranylgeranyltransferase-I (GGTase-I) complex, as the direct target of YAP1/TAZ pathway inhibitors. The novel small molecule inhibitors block the activation of Rho-GTPases, leading to subsequent inactivation of YAP1/TAZ and inhibition of cancer cell proliferation in vitro. Multi-parameter optimization resulted in BAY-593, an in vivo probe with favorable PK properties, which demonstrated anti-tumor activity and blockade of YAP1/TAZ signaling in vivo . SIGNIFICANCE YAP1/TAZ have been shown to be aberrantly activated oncogenes in several human solid tumors, resulting in enhanced cell proliferation, metastasis and provision of a pro-tumorigenic microenvironment, making YAP1/TAZ targets for novel cancer therapies. Yet, the development of effective inhibitors of these potent oncogenes has been challenging. In this work, we break new ground in this direction through the identification of novel inhibitors of YAP1/TAZ activity. Graphical abstract HIGHLIGHTS Novel YAP1/TAZ pathway inhibitors identified by phenotypic high-throughput screen Target deconvolution identifies GGTase-I as the direct target of the novel YAP1/TAZ pathway inhibitors GGTase-I inhibitors block Rho-GTPase signaling and downstream YAP1/TAZ GGTase-I inhibitor BAY-593 demonstrates potent anti-tumor activity in vivo