Abstract Bone tissue engineering is a rapidly advancing field that seeks to develop new functional bone tissue, harnessing materials for application in bone defects which may fail to heal without intervention, as seen in critical-sized bone defects. The material properties must be developed, tailored and optimised as the environment progresses, through increasing animal size and complexity, of the target bone defect site. This study has examined the potential of a poly(caprolactone) trimethacrylate (PCL-TMA) 3D-printable scaffold with select bioactive coatings to function as a scaffold to augment bone formation. Three bioactive coatings were examined, i) elastin-like protein (ELP), ii) poly (ethyl acrylate) (PEA), fibronectin (FN) and bone morphogenetic protein-2 (BMP-2) applied sequentially (PEA/FN/BMP-2) and iii) both ELP and PEA/FN/BMP-2 coatings applied concurrently. The PCL-TMA scaffold construct was observed to be a robust scaffold material and the bioactive coatings applied were found to be biocompatible, with a significant osteogenic response from human skeletal cell populations observed in vitro . The PCL-TMA scaffold and bioactive coatings supported angiogenesis and displayed excellent biocompatibility following evaluation on the chorioallantoic membrane (CAM) assay. Biocompatibility was confirmed, however, no significant bone formation was detected, following examination of heterotopic bone formation in the murine subcutaneous implantation model, whereas extensive mineralisation was observed in the positive control material of collagen sponge with BMP-2. The absence of bone formation on the PCL-TMA scaffolds, in vivo , was potentially a consequence of the method of action of the applied coatings, the surface area of the scaffold construct for BMP-2 binding and the necessity of an appropriate in vivo environment to facilitate skeletal cell ingress, warranting future examination in an orthotopic bone defect model of bone tissue repair. The current studies demonstrate the development of a range of innovative scaffold constructs with in vitro efficacy and clearly illustrate the importance of an appropriate in vivo environment to validate in vitro functionality prior to scale up and preclinical application.

Abstract Fracture non-union occurs as a consequence of various factors, leading to the development of potentially substantial bone defects. Biomaterial-based approaches for bone regeneration aim to explore alternative strategies to repair non-healing fractures and critical-sized bone defects. Thus, rigorous assessment of the ability to translate biomaterials towards clinical use is vital. Growth factors induce an effect on cells to change their phenotype, behaviour and initiate signalling pathways, leading to an effect on matrix deposition and tissue formation. Bone morphogenetic protein-2 (BMP-2) is a potent osteogenic growth factor, with a rapid clearance time in vivo necessitating clinical use of high doses, with potential deleterious side-effects. This work explored the potential for Laponite™ nanoclay coating of poly(caprolactone) trimethacrylate (PCL-TMA900) scaffolds to bind BMP-2 for enhanced osteoinduction. In vitro experiments confirmed the cytocompatibility of the PCL-TMA900 scaffolds and effective osteogenic differentiation of C2C12 myoblast cells in response to the Laponite/BMP-2 coating. The chorioallantoic membrane (CAM) assay verified PCL-TMA900 scaffold material biocompatibility and ability to support angiogenesis. A murine subcutaneous implantation model assessed heterotopic bone formation in response to the Laponite/BMP-2 coating, when used immediately post-coating and after 24 hours of room temperature storage, to evaluate a delayed use manner. The Laponite/BMP-2 coated PCL-TMA900 scaffolds implanted showed consistent, significant bone formation over the study period compared to the uncoated PCL-TMA 900 scaffold and BMP-2 only coated control scaffolds in vivo , indicating the ability of Laponite to bind the BMP-2 to the PCL-TMA900 scaffold. Bone formed peripherally around the Laponite/BMP-2 coated scaffold, with no aberrant bone formation observed. The Laponite/BMP-2 coating was found to retain its bioactivity after storage for 24 hours prior to use in vivo , however this was not to the same volume or reliability of bone formation as when used immediately post-coating. To take these studies forward, the Laponite/BMP-2 coating warrants examination in a critical-sized bone defect model to assess efficacy in an osseous site.

Biomaterial-based approaches for bone regeneration seek to explore alternative strategies to repair non-healing fractures and critical-sized bone defects. Fracture non-union occurs due to a number of factors resulting in the formation of bone defects. Rigorous evaluation of the biomaterials in relevant models and assessment of their potential to translate towards clinical use is vital. Large animal experimentation can be used to model fracture non-union while scaling-up materials for clinical use. Growth factors modulate cell phenotype, behaviour and initiate signalling pathways leading to changes in matrix deposition and tissue formation. Bone morphogenetic protein-2 (BMP-2) is a potent osteogenic growth factor, with a rapid clearance time in vivo necessitating clinical use at a high dose, with potential deleterious side-effects. The current studies have examined the potential for Laponite® nanoclay coated poly(caprolactone) trimethacrylate (PCL-TMA900) scaffolds to bind BMP-2 for enhanced osteoinduction in a large animal critical-sized bone defect. An ovine femoral condyle defect model confirmed PCL-TMA900 scaffolds coated with Laponite®/BMP-2 produced significant bone formation compared to the uncoated PCL-TMA 900 scaffold in vivo, assessed by micro-computed tomography (μCT) and histology. This indicated the ability of Laponite® to deliver the bioactive BMP-2 on the PCL-TMA900 scaffold. Bone formed around the Laponite®/BMP-2 coated PCL-TMA900 scaffold, with no erroneous bone formation observed away from the scaffold material confirming localisation of BMP-2 delivery. The current studies demonstrate the ability of a nanoclay to localise and deliver bioactive BMP-2 within a tailored octet-truss scaffold for efficacious bone defect repair in a large animal model with significant implications for translation to the clinic.

Abstract Bone regeneration in critical-sized defects is a clinical challenge, with biomaterials under constant development aiming at enhancing the natural bone healing process. The delivery of bone morphogenetic proteins (BMPs) in appropriate carriers represents a promising strategy for bone defect treatment but optimisation of the spatial-temporal release is still needed for the regeneration of bone with biological, structural, and mechanical properties comparable to the native tissue. Nonlinear micro finite element (μFE) models can address some of these challenges by providing a tool able to predict the biomechanical strength and microdamage onset in newly formed bone when subjected to physiological or supraphysiological loads. Yet, these models need to be validated against experimental data. In this study, experimental local displacements in newly formed bone induced by osteoinductive biomaterials subjected to in situ X-ray computed tomography compression in the apparent elastic regime and measured using digital volume correlation (DVC) were used to validate μFE models. Displacement predictions from homogeneous linear μFE models were highly correlated to DVC-measured local displacements, while tissue heterogeneity capturing mineralisation differences showed negligible effects. Nonlinear μFE models improved the correlation and showed that tissue microdamage occurs at low apparent strains. Microdamage seemed to occur next to large cavities or in biomaterial-induced thin trabeculae, independent of the mineralisation. While localisation of plastic strain accumulation was similar, the amount of damage accumulated in these locations was slightly higher when including material heterogeneity. These results demonstrate the ability of the nonlinear μFE model to capture local microdamage in newly formed bone tissue and can be exploited to improve the current understanding of healing bone and mechanical competence. This will ultimately aid the development of BMPs delivery systems for bone defect treatment able to regenerate bone with optimal biological, mechanical, and structural properties.

Abstract Decellularized tissues offer significant potential as biological materials for tissue regeneration due to their ability to preserve the complex compositions and architecture of the native extracellular matrix (ECM). While the use of decellularized ECM hydrogels from bovine and porcine bone tissues has been extensively studied, the evaluation and derivation of decellularized matrices from human bone tissue remain largely unexplored. The objective of this study was to investigate how the physiochemical and biological properties of ECM hydrogels derived from human bone ECM could be controlled by manipulating bone powder size (45-250 μm, 250-1000 μm, and 1000-2000 μm) and ECM composition through modulation of digestion time (3, 5, and 7 days). The current studies demonstrate that a reduction in material bone powder size and an increase in ECM digestion time resulted in enhanced protein concentrations in the ECM hydrogels, accompanied by the presence of a diverse array of proteins. Furthermore, these adjustments in the physicochemical properties generated improved gelation strength of the hydrogels. The evaluation of human bone marrow-derived stromal cells (HBMSCs) cultured on ECM hydrogels derived from 45-250 μm bone powder, treated for 7 days, demonstrated enhanced osteogenic differentiation compared to hydrogels derived from both larger bone powders and collagen gels. In conclusion, this study highlights the significant promise of human bone ECM hydrogels as biologically active materials for bone regeneration. The ability to manipulate digestion time and bone powder size enables the generation of hydrogels with enhanced release of ECM proteins and appropriate gelation and rheological properties, offering new opportunities for application in bone tissue engineering.

Abstract Bone tissue engineering is a rapidly advancing field that seeks to develop efficacious approaches for treating non-healing fractures and large bone defects. Healing complications arise due to trauma, disease, infection, aseptic loosening of orthopaedic implants or iatrogenic causes. An ideal biodegradable scaffold would induce and support bone formation until the bone matrix is sufficiently stable to facilitate healing. The current study has examined bone augmentation, using functionalised coated scaffolds, with the hypothesised potential to induce skeletal cell differentiation for the repair of critical-sized bone defects. However, challenges in clinical translation arise from the alterations in cellular microenvironment that are present in the translation from in vitro to in vivo with the application of animal models of progressively increasing size and complexity of the implantation site. 3D printed, porous poly(caprolactone) trimethacrylate (denoted PCL-TMA900) scaffolds were applied within a murine femur defect, stabilised by a polyimide intramedullary pin, to assess the efficacy of select coatings in inducing bone formation. The PCL-TMA900 scaffolds were coated with i) elastin-like polypeptide (ELP), ii) poly(ethyl acrylate)/fibronectin/bone morphogenetic protein-2 (PEA/FN/BMP-2), iii) both ELP and PEA/FN/BMP-2 concurrently, or iv) Laponite™ nanoclay binding BMP-2, as bioactive coatings. The murine femur defect model was refined to assess the coated PCL-TMA900 scaffolds in an osseous defect, with sequential microcomputed tomography (µCT) and histological analysis of the new bone tissue. Overall, PCL-TMA900 was found to be an optimal robust, biocompatible, 3D printable scaffold material. All PCL-TMA900 scaffolds, uncoated and coated, showed integration with the femur. The PCL-TMA900 scaffold coated with the nanoclay material Laponite™ and BMP-2 induced consistent, significant bone formation compared to the uncoated PCL-TMA900 scaffold. Bone formation was observed within the pores of the Laponite/BMP-2 coated scaffold. Critically, no heterotopic bone formation was observed as the BMP-2 was retained around the scaffold and not released into the tissues, producing bone around the scaffold in the desired shape and volume, compared to bone formation observed with the positive control (collagen sponge/BMP-2 construct). In comparison, the ELP coated and PEA/FN/BMP-2 scaffolds did not demonstrate significant or consistent bone formation compared to uncoated PCL-TMA900 control scaffolds. In summary, nanoclay Laponite™/BMP-2 coated PCL-TMA900 scaffolds offer a biodegradable, osteogenic construct for bone augmentation with potential for development into a large scale polymer scaffold for translation to the clinic.

Abstract Autograft or metal implants are routinely used in skeletal repair but can fail to provide a long-term clinical resolution, emphasising the need for a functional biomimetic tissue engineering alternative. An attractive sustainable opportunity for tissue regeneration would be the application of human bone waste tissue for the synthesis of a material ink for 3D bioprinting of skeletal tissue. The use of human bone extracellular matrix (bone-ECM) offers an exciting potential for the development of an appropriate micro-environment for human bone marrow stromal cells (HBMSCs) to proliferate and differentiate along the osteogenic lineage. Extrusion-based deposition was mediated by the blending of human bone-ECM (B) with nanoclay (L, Laponite ® ) and alginate (A) polymer, to engineer a novel material ink (LAB). The inclusion of nanofiller and polymeric material increased the rheological, printability, and drug retention properties and, critically, the preservation of HBMSCs viability upon printing. The composite human bone-ECM-based 3D constructs containing vascular endothelial growth factor (VEGF) enhanced vascularisation following implantation in an ex vivo chick chorioallantoic membrane (CAM) model. Addition of bone morphogenetic protein-2 (BMP-2) with HBMSCs further enhanced vascularisation together with mineralisation after only 7 days. The current study demonstrates the synergistic combination of nanoclay with biomimetic materials, (alginate and bone-ECM) to support the formation of osteogenic tissue both in vitro and ex vivo and offers a promising novel 3D bioprinting approach to personalised skeletal tissue repair. Graphical Abstract Engineering nanoclay-based bone ECM novel bioink for bone regeneration. Human bone trabecular tissue was demineralised, decellularised and blended with nanoclay (Laponite®) and alginate after digestion. The resulting ink was investigated for printability following rheological and filament fusion investigation. The microstructural arrangement of the blends was examined together with viability and functionality of bioprinted HBMSCs. Finally, the ability of the novel blend to support drug release ex vivo in a CAM model was determined confirming the potential of the bone ECM ink to support bone formation.

Abstract Alterations in Dp71 expression, the most ubiquitous dystrophin isoform, have been associated with patient survival across tumours. Intriguingly, in certain malignancies, Dp71 acts as a tumour suppressor, while manifesting oncogenic properties in others. This diversity could be explained by the expression of two Dp71 splice variants encoding proteins with distinct C-termini, each with specific properties. Expression of these variants has impeded the exploration of their unique roles. Using CRISPR/Cas9, we ablated the Dp71f variant with the alternative C-terminus in a sarcoma cell line not expressing the canonical C-terminal variant, and conducted molecular (RNAseq) and functional characterisation of the knockout cells. Dp71f ablation induced major transcriptomic alterations, particularly affecting the expression of genes involved in calcium signalling and ECM-receptor interaction pathways. The genome-scale metabolic analysis identified significant downregulation of glucose transport via membrane vesicle reaction (GLCter) and downregulated glycolysis/gluconeogenesis pathway. Functionally, these molecular changes corresponded with, increased calcium responses, cell adhesion, proliferation, survival under serum starvation and chemotherapeutic resistance. Knockout cells showed reduced GLUT1 protein expression, survival without attachment and their migration and invasion in vitro and in vivo were unaltered, despite increased matrix metalloproteinases release. Our findings emphasise the importance of alternative splicing of dystrophin transcripts and underscore the role of the Dp71f variant, which appears to govern distinct cellular processes frequently dysregulated in tumour cells. The loss of this regulatory mechanism promotes sarcoma cell survival and treatment resistance. Thus, Dp71f is a target for future investigations exploring the intricate functions of specific DMD transcripts in physiology and across malignancies.

Abstract Biomaterial-based approaches for bone regeneration seek to explore alternative strategies to repair non-healing fractures and critical-sized bone defects. Fracture non-union occurs due to a number of factors resulting in the formation of bone defects. Rigorous evaluation of the biomaterials in relevant models and assessment of their potential to translate towards clinical use is vital. Large animal experimentation can be used to model fracture non-union while scaling-up materials for clinical use. Growth factors modulate cell phenotype, behaviour and initiate signalling pathways leading to changes in matrix deposition and tissue formation. Bone morphogenetic protein-2 (BMP-2) is a potent osteogenic growth factor, with a rapid clearance time in vivo necessitating clinical use at a high dose, with potential deleterious side-effects. The current studies have examined the potential for Laponite ® nanoclay coated poly(caprolactone) trimethacrylate (PCL-TMA900) scaffolds to bind BMP-2 for enhanced osteoinduction in a large animal critical-sized bone defect. An ovine femoral condyle defect model confirmed PCL-TMA900 scaffolds coated with Laponite ® /BMP-2 produced significant bone formation compared to the uncoated PCL-TMA 900 scaffold in vivo , assessed by micro-computed tomography (µCT) and histology. This indicated the ability of Laponite ® to deliver the bioactive BMP-2 on the PCL-TMA900 scaffold. Bone formed around the Laponite ® /BMP-2 coated PCL-TMA900 scaffold, with no erroneous bone formation observed away from the scaffold material confirming localisation of BMP-2 delivery. The current studies demonstrate the ability of a nanoclay to localise and deliver bioactive BMP-2 within a tailored octet-truss scaffold for efficacious bone defect repair in a large animal model with significant implications for translation to the clinic.

Osteoarthritis (OA), a degenerative joint disease presenting as loss of cartilage, is a leading cause of disability worldwide, increasingly with aging populations. Early detection is crucial for effective treatment since there is no definitive cure, yet, current assessment techniques fall short and rely on ionising radiation or invasive procedures. We report an application of multimodal "spectromics", low-level abstraction data fusion of non-destructive NIR Raman and NIR-SWIR absorption spectroscopy, providing an enhanced, interpretable "fingerprint" for diagnosis of OA in human cartilage. Under multivariate statistical analyses and supervised machine learning, cartilage was classified with high precision and disease state predicted accurately. Discriminatory features within the spectromics fingerprint elucidated clinically relevant tissue components (OA biomarkers). Further, we have developed an automated goniometric 3D hyperspectral mapping setup, and characterised OA cartilage on whole human femoral heads post hip arthroplasty for spatially-resolved spectromics. These results lay foundation for minimally invasive, deeply penetrating, label-free, chemometric diagnosis of the hip.