Significance Chimeric antigen receptor T (CAR-T) cell therapy has produced promising results in clinical trials but has been challenged by the inability to control engineered cells once infused into the patient. Here we present a generalizable method of controlling CAR-T cells using peptide-engrafted antibody-based molecular switches that act as a bridge between the target cell and CAR-T cell. We show that switches specific for CD19 govern the activity, tissue-homing, cytokine release, and phenotype of switchable CAR-T cells in a dose-titratable manner using xenograft mouse models of B-cell leukemia. We expect that this method of tuning CAR-T cell responses will provide improved safety and versatility of CAR–T-cell therapy in the clinic.

Targeting STING for cancer therapy Activation of the STING (stimulator of interferon genes) protein by cyclic dinucleotide metabolites plays a critical role in antitumor immunity. The development of synthetic STING agonists is therefore being pursued as a strategy for cancer therapy, but the inherent instability of dinucleotides has limited current efforts. Pan et al. and Chin et al. identified stable STING agonists that act in a “closed” conformation similar to the natural STING ligand, cyclic guanosine monophosphate–adenosine monophosphate (see the Perspective by Gajewski and Higgs). The small molecules can be given orally—an advantage over previously developed STING agonists, which required intratumoral administration. After oral or systemic administration in mice, the agonists activated STING and diverse immune cell types to promote antitumor immunity. These studies represent progress toward clinically viable STING agonists for cancer immunotherapy. Science , this issue p. eaba6098 , p. 993 ; see also p. 921

Abstract Transcriptional co-regulators, which mediate chromatin-dependent transcriptional signaling, represent tractable targets to modulate tumorigenic gene expression programs with small molecules. Genetic loss-of-function studies have recently implicated the transcriptional co-activator, ENL, as a selective requirement for the survival of acute leukemia and highlighted an essential role for its chromatin reader YEATS domain. Motivated by these discoveries, we executed a screen of nearly 300,000 small molecules and identified an amido-imidazopyridine inhibitor of the ENL YEATS domain (IC 50 = 7 µM). Leveraging a SuFEx-based high-throughput approach to medicinal chemistry optimization, we discovered SR-0813 (IC 50 = 25 nM), a potent and selective ENL/AF9 YEATS domain inhibitor that exclusively inhibits the growth of ENL-dependent leukemia cell lines. Armed with this tool and a first-in-class ENL PROTAC, SR-1114, we detailed the response of AML cells to pharmacological ENL disruption for the first time. Most notably, displacement of ENL from chromatin by SR-0813 elicited a strikingly selective suppression of ENL target genes, including HOXA9/10, MYB, MYC and a number of other leukemia proto-oncogenes. Our study reproduces a number of key observations previously made by CRISPR/Cas9 loss of function and dTAG-mediated degradation, and therefore, both reinforces ENL as an emerging leukemia target and validates SR-0813 as a high-quality chemical probe.