ABSTRACT Metagenomics offers the possibility to screen for versatile biocatalysts. In this study, the microbial community of the Sorghum bicolor rhizosphere was spiked with technical cashew nut shell liquid, and after incubation, the eDNA was extracted and subsequently used to build a metagenomic library. We report the biochemical features and crystal structure of a novel esterase from the family IV, EH 0 , retrieved from an uncultured sphingomonad after a functional screen in tributyrin agar plates. EH 0 (T opt , 50 °C; T m , 55.7 °C; pH opt , 9.5) was stable in the presence of 10-20% v/v organic solvents and exhibited hydrolytic activity against p -nitrophenyl esters from acetate to palmitate, preferably butyrate (496 U mg −1 ), and a large battery of 69 structurally different esters (up to 30.2 U mg −1 ), including bis(2-hydroxyethyl)-terephthalate (0.16 ± 0.06 U mg −1 ). This broad substrate specificity contrasts with the fact that EH 0 showed a long and narrow catalytic tunnel, whose access appears to be hindered by a thigth folding of its cap domain. We propose that this cap domain is a highly flexible structure whose opening is mediated by unique structural elements, one of which is the presence of two contiguous proline residues likely acting as possible hinges, that altogether allow for the entrance of the substrates. Therefore, this work provides a new role for the cap domain, which until now was thought to be immobile elements that contain hydrophobic patches involved in substrate pre-recognition and in turn substrate specificity within family IV esterases. IMPORTANCE A better understanding of structure–function relationships of enzymes allows revealing key structural motifs or elements. Here, we studied the structural basis of the substrate promiscuity of EH 0 , a family IV esterase, isolated from a sample of the Sorghum bicolor rhizosphere microbiome exposed to technical cashew nut shell liquid. The analysis of EH 0 revealed the potential of the sorghum rhizosphere microbiome as a source of enzymes with interesting properties, such as pH and solvent tolerance and remarkably broad substrate promiscuity. Its structure resembled those of homologous proteins from mesophilic Parvibaculum and Erythrobacter spp. and hyperthermophilic Pyrobaculum and Sulfolobus spp. and had a very narrow, single-entry access tunnel to the active site, access which is controlled by a capping domain that includes a number of not conserved proline residues. These structural markers, distinct from those of other substrate promiscuous esterases, can help tuning substrate profiles beyond tunnel and active site engineering.

Abstract Protein hydrolysates made from marine by-products are very nutritious, but frequently contain trimethylamine (TMA) which has an unattractive fish-like smell. Bacterial trimethylamine monooxygenases can oxidize TMA into the odorless trimethylamine N -oxide (TMAO) and have been shown to reduce TMA-levels in a salmon protein hydrolysate. To make the Methylophaga aminisulfidivorans trimethylamine monooxygenase, mFMO, more suitable for industrial application, we engineered it using the Protein Repair One-Stop Shop (PROSS) algorithm. All seven mutant variants, containing 8-28 mutations, displayed increases in melting temperature between 4.7 °C and 9.0 °C. The crystal structure of the most thermostable variant, mFMO_20, revealed the presence of four new stabilizing interhelical salt bridges, each involving a mutated residue. Finally, mFMO_20 significantly outperformed native mFMO in its ability to reduce TMA levels in a salmon protein hydrolysate at industrially relevant temperatures. Importance Marine by-products are a high-quality source for peptide ingredients, but the unpleasant fishy odour caused by TMA limits their access to the food market. This problem can be mitigated by enzymatic conversion of TMA into the odourless TMAO. Enzymes isolated from nature must be adapted to industrial requirements, however, such as the ability to tolerate high temperatures. This study has demonstrated that mFMO can be engineered to become more thermostable. Moreover, unlike the native enzyme, the best thermostable variant efficiently oxidized TMA in a salmon protein hydrolysate at industrial temperatures. Our results present an important next step towards application of this novel and highly promising enzyme technology in marine biorefineries.