A major challenge for crop research in the 21st century is how to predict crop performance as a function of genetic architecture. Advances in “next generation” DNA sequencing have greatly improved genotyping efficiency and reduced genotyping costs. Methods for characterizing plant traits (phenotypes), however, have much progressed more slowly over the past 30 years, and constraints in phenotyping capability limit our ability to dissect the genetics of quantitative traits, especially those related to harvestable yield and stress tolerance. As a case in point, mapping populations for major crops may consist of 20 or more families, each represented by as many as 200 lines, necessitating field trials with over 20,000 plots at a single location. Investing in the resources and labor needed to quantify even a few agronomic traits for linkage with genetic markers in such massive populations is currently impractical for most breeding programs. Herein, we define key criteria, experimental approaches, equipment and data analysis tools required for robust, high-throughput field-based phenotyping (FBP). The focus is on simultaneous proximal sensing for spectral reflectance, canopy temperature, and plant architecture where a vehicle carrying replicated sets of sensors records data on multiple plots, with the potential to record data throughout the crop life cycle. The potential to assess traits, such as adaptations to water deficits or acute heat stress, several times during a single diurnal cycle is especially valuable for quantifying stress recovery. Simulation modeling and related tools can help estimate physiological traits such as canopy conductance and rooting capacity. Many of the underlying techniques and requisite instruments are available and in use for precision crop management. Further innovations are required to better integrate the functions of multiple instruments and to ensure efficient, robust analysis of the large volumes of data that are anticipated. A complement to the core proximal sensing is high-throughput phenotyping of specific traits such as nutrient status, seed composition, and other biochemical characteristics, as well as underground root architecture. The ability to “ground truth” results with conventional measurements is also necessary. The development of new sensors and imaging systems undoubtedly will continue to improve our ability to phenotype very large experiments or breeding nurseries, with the core FBP abilities achievable through strong interdisciplinary efforts that assemble and adapt existing technologies in novel ways.

Abstract Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) plants subjected to water deficit, sodium chloride (NaCl), or abscisic acid treatments were shown to exhibit a significant increase in the amount of leaf cuticular lipids. These stress treatments led to increases in cuticular wax amount per unit area of 32% to 80%, due primarily to 29% to 98% increases in wax alkanes. Of these treatments, only water deficit increased the total cutin monomer amount (by 65%), whereas both water deficit and NaCl altered the proportional amounts of cutin monomers. Abscisic acid had little effect on cutin composition. Water deficit, but not NaCl, increased leaf cuticle thickness (by 49%). Electron micrographs revealed that both water-deprived and NaCl-treated plants had elevated osmium accumulation in their cuticles. The abundance of cuticle-associated gene transcripts in leaves was altered by all treatments, including those performed in both pot-grown and in vitro conditions. Notably, the abundance of the ECERIFERUM1 gene transcript, predicted to function in alkane synthesis, was highly induced by all treatments, results consistent with the elevated alkane amounts observed in all treatments. Further, this induction of cuticle lipids was associated with reduced cuticle permeability and may be important for plant acclimation to subsequent water-limited conditions. Taken together, these results show that Arabidopsis provides an excellent model system to study the role of the cuticle in plant response to drought and related stresses, and its associated genetic and cellular regulation.

Abstract Salt cress (Thellungiella halophila) is a small winter annual crucifer with a short life cycle. It has a small genome (about 2 × Arabidopsis) with high sequence identity (average 92%) with Arabidopsis, and can be genetically transformed by the simple floral dip procedure. It is capable of copious seed production. Salt cress is an extremophile native to harsh environments and can reproduce after exposure to extreme salinity (500 mm NaCl) or cold to −15°C. It is a typical halophyte that accumulates NaCl at controlled rates and also dramatic levels of Pro (>150 mm) during exposure to high salinity. Stomata of salt cress are distributed on the leaf surface at higher density, but are less open than the stomata of Arabidopsis and respond to salt stress by closing more tightly. Leaves of salt cress are more succulent-like, have a second layer of palisade mesophyll cells, and are frequently shed during extreme salt stress. Roots of salt cress develop both an extra endodermis and cortex cell layer compared to Arabidopsis. Salt cress, although salt and cold tolerant, is not exceptionally tolerant of soil desiccation. We have isolated several ethyl methanesulfonate mutants of salt cress that have reduced salinity tolerance, which provide evidence that salt tolerance in this halophyte can be significantly affected by individual genetic loci. Analysis of salt cress expressed sequence tags provides evidence for the presence of paralogs, missing in the Arabidopsis genome, and for genes with abiotic stress-relevant functions. Hybridizations of salt cress RNA targets to an Arabidopsis whole-genome oligonucleotide array indicate that commonly stress-associated transcripts are expressed at a noticeably higher level in unstressed salt cress plants and are induced rapidly under stress. Efficient transformation of salt cress allows for simple gene exchange between Arabidopsis and salt cress. In addition, the generation of T-DNA-tagged mutant collections of salt cress, already in progress, will open the door to a new era of forward and reverse genetic studies of extremophile plant biology.

Insertional mutagenesis of Arabidopsis ecotype C24 was used to identify a novel mutant, designated wax2, that had alterations in both cuticle membrane and cuticular waxes. Arabidopsis mutants with altered cuticle membrane have not been reported previously. Compared with the wild type, the cuticle membrane of wax2 stems weighed 20.2% less, and when viewed using electron microscopy, it was 36.4% thicker, less opaque, and structurally disorganized. The total wax amount on wax2 leaves and stems was reduced by >78% and showed proportional deficiencies in the aldehydes, alkanes, secondary alcohols, and ketones, with increased acids, primary alcohols, and esters. Besides altered cuticle membranes, wax2 displayed postgenital fusion between aerial organs (especially in flower buds), reduced fertility under low humidity, increased epidermal permeability, and a reduction in stomatal index on adaxial and abaxial leaf surfaces. Thus, wax2 reveals a potential role for the cuticle as a suppressor of postgenital fusion and epidermal diffusion and as a mediator of both fertility and the development of epidermal architecture (via effects on stomatal index). The cloned WAX2 gene (verified by three independent allelic insertion mutants with identical phenotypes) codes for a predicted 632–amino acid integral membrane protein with a molecular mass of 72.3 kD and a theoretical pI of 8.78. WAX2 has six transmembrane domains, a His-rich diiron binding region at the N-terminal region, and a large soluble C-terminal domain. The N-terminal portion of WAX2 is homologous with members of the sterol desaturase family, whereas the C terminus of WAX2 is most similar to members of the short-chain dehydrogenase/reductase family. WAX2 has 32% identity to CER1, a protein required for wax production but not for cuticle membrane production. Based on these analyses, we predict that WAX2 has a metabolic function associated with both cuticle membrane and wax synthesis. These studies provide new insight into the genetics and biochemistry of plant cuticle production and elucidate new associations between the cuticle and diverse aspects of plant development.

Abstract The softening of fleshy fruits, such as tomato (Solanum lycopersicum), during ripening is generally reported to result principally from disassembly of the primary cell wall and middle lamella. However, unsuccessful attempts to prolong fruit firmness by suppressing the expression of a range of wall-modifying proteins in transgenic tomato fruits do not support such a simple model. ‘Delayed Fruit Deterioration’ (DFD) is a previously unreported tomato cultivar that provides a unique opportunity to assess the contribution of wall metabolism to fruit firmness, since DFD fruits exhibit minimal softening but undergo otherwise normal ripening, unlike all known nonsoftening tomato mutants reported to date. Wall disassembly, reduced intercellular adhesion, and the expression of genes associated with wall degradation were similar in DFD fruit and those of the normally softening ‘Ailsa Craig’. However, ripening DFD fruit showed minimal transpirational water loss and substantially elevated cellular turgor. This allowed an evaluation of the relative contribution and timing of wall disassembly and water loss to fruit softening, which suggested that both processes have a critical influence. Biochemical and biomechanical analyses identified several unusual features of DFD cuticles and the data indicate that, as with wall metabolism, changes in cuticle composition and architecture are an integral and regulated part of the ripening program. A model is proposed in which the cuticle affects the softening of intact tomato fruit both directly, by providing a physical support, and indirectly, by regulating water status.

Summary Plant cuticle is an extracellular lipid‐based matrix of cutin and waxes, which covers aerial organs and protects them from many forms of environmental stress. We report here the characterization of CER8 / LACS1 , one of nine Arabidopsis long‐chain acyl‐CoA synthetases thought to activate acyl chains. Mutations in LACS1 reduced the amount of wax in all chemical classes on the stem and leaf, except in the very long‐chain fatty acid (VLCFA) class wherein acids longer than 24 carbons (C 24 ) were elevated more than 155%. The C 16 cutin monomers on lacs1 were reduced by 37% and 22%, whereas the C 18 monomers were increased by 28% and 20% on stem and leaf, respectively. Amounts of wax and cutin on a lacs1‐1 lacs2‐3 double mutant were much lower than on either parent, and lacs1‐1 lacs2‐3 had much higher cuticular permeability than either parent. These additive effects indicate that LACS1 and LACS2 have overlapping functions in both wax and cutin synthesis. We demonstrated that LACS1 has synthetase activity for VLCFAs C 20 –C 30 , with highest activity for C 30 acids. LACS1 thus appears to function as a very long‐chain acyl‐CoA synthetase in wax metabolism. Since C 16 but not C 18 cutin monomers are reduced in lacs1 , and C 16 acids are the next most preferred acid (behind C 30 ) by LACS1 in our assays, LACS1 also appears to be important for the incorporation of C 16 monomers into cutin polyester. As such, LACS1 defines a functionally novel acyl‐CoA synthetase that preferentially modifies both VLCFAs for wax synthesis and long‐chain (C 16 ) fatty acids for cutin synthesis.

Plant cuticles are broadly composed of two major components: polymeric cutin and a mixture of waxes, which infiltrate the cutin matrix and also accumulate on the surface, forming an epicuticular layer. Although cuticles are thought to play a number of important physiological roles, with the most important being to restrict water loss from aerial plant organs, the relative contributions of cutin and waxes to cuticle function are still not well understood. Tomato (Solanum lycopersicum) fruits provide an attractive experimental system to address this question as, unlike other model plants such as Arabidopsis, they have a relatively thick astomatous cuticle, providing a poreless uniform material that is easy to isolate and handle. We identified three tomato mutants, cutin deficient 1 (cd1), cd2 and cd3, the fruit cuticles of which have a dramatic (95-98%) reduction in cutin content and substantially altered, but distinctly different, architectures. This cutin deficiency resulted in an increase in cuticle surface stiffness, and in the proportions of both hydrophilic and multiply bonded polymeric constituents. Furthermore, our data suggested that there is no correlation between the amount of cutin and the permeability of the cuticle to water, but that cutin plays an important role in protecting tissues from microbial infection. The three cd mutations were mapped to different loci, and the cloning of CD2 revealed it to encode a homeodomain protein, which we propose acts as a key regulator of cutin biosynthesis in tomato fruit.

Abstract Stevia rebaudiana (stevia) is a plant in the Asteraceae that contains several biologically active compounds including the antidiabetic diterpene glycosides (e.g. stevioside, rebaudioside and dulcoside) that can serve as zero-calorie sugar alternatives. In this study, an elicitation strategy was applied using 5% polyethylene glycol (PEG), sodium chloride (NaCl; 50 and 100 mM) and gibberellic acid (2.0 and 4.0 mg/L GA 3 ) to investigate their effect on shoot morphogenesis, and the production of phenolics, flavonoids, total soluble sugars, proline and stevioside, as well as antioxidant activity, in shoot cultures of S. rebaudiana . Herewith, the media supplemented with 2 mg/L and 4 mg/L GA 3 exhibited the highest shooting response (87% and 80%). The augmentation of lower concentrations of GA 3 (2 mg/L) in combination with 6-benzylaminopurine (BAP) resulted in the maximum mean shoot length (11.1 cm). The addition of 100 mM NaCl salts to the media led to the highest observed total phenolics content (TPC; 4.11 mg/g-DW compared to the control 0.52 mg/g-DW), total flavonoids content (TFC; 1.26 mg/g-DW) and polyphenolics concentration (5.39 mg/g-DW) in shoots cultured. However, the maximum antioxidant activity (81.8%) was observed in shoots raised in media treated with 50 mM NaCl. The application of 2 mg/L of GA 3 resulted in the highest accumulation of proline (0.99 μg/mL) as compared to controls (0.37 μg/mL). Maximum stevioside content (71 µL/mL) was observed in cultures supplemented with 100 mM NaCl and 5% PEG, followed by the 4 mg/L GA 3 treatment (70 µL/mL) as compared to control (60 µL/mL). Positive correlation was observed between GA 3 and stevioside content. Notably, these two compounds are derived from a shared biochemical pathway. These results suggest that elicitation is an effective option to enhance the accumulation of steviosides and other metabolites and provides the groundwork for future industrial scale production using bioreactors.

The fragility of a single-source, geographically concentrated supply of natural rubber, a critical material of the modern economy, has brought guayule (Parthenium argentatum A. Gray) to the forefront as an alternative source of natural rubber. The improvement of guayule for commercial-scale production has been limited by the lack of genomic tools and well-characterized genetic resources required for genomics-assisted breeding. To address this issue, we developed nearly 50,000 single nucleotide polymorphism (SNP) genetic markers and genotyped 69 accessions of guayule and its sister taxa mariola (Parthenium incanum Kunth), representing the entire available NALPGRU germplasm collection. We identified multiple interspecific hybrid accessions previously considered guayule, including six guayule-mariola hybrids and non-mariola interspecific hybrid accessions AZ-2 and AZ-3, two commonly used high-yielding cultivars. We dissected genetic diversity within the collection to identify a highly diverse subset of guayule accessions, and showed that wild guayule stands in Big Bend National Park, Texas, USA have the potential to provide hitherto untapped guayule genetic diversity. Together, these results provide the most thorough genetic characterization of guayule germplasm to date and lay the foundation for rapid genetic improvement of commercial guayule germplasm.