Transfer printing is a technology widely used in the production of flexible electronics and vertically stacked devices, which involves the transfer of predefined electronic components from a rigid donor substrate to a receiver substrate with a stamp, potentially avoiding the limitations associated with lithographic processes. However, the stamps typically used in transfer printing have several limitations related to unwanted organic solvents, substantial loading, film damage, and inadequate adhesion switching ratios. This study introduces a thermally responsive phase-change stamp for efficient and damage-free transfer printing inspired by the adhesion properties observed during water freezing and ice melting. The stamp employs phase-change composites and simple fabrication protocols, providing robust initial adhesion strength and switchability. The underlying mechanism of switchable adhesion is investigated through experimental and numerical studies. Notably, the stamp eliminates the need for extra preload by spontaneously interlocking with the ink through in situ melting and crystallization. This minimizes ink damage and wrinkle formation during pickup while maintaining strong initial adhesion. During printing, the stamp exhibits a sufficiently weak adhesion state for reliable and consistent release, enabling multiscale, conformal, and damage-free transfer printing, ranging from nano- to wafer-scale. The fabrication of nanoscale short-channel transistors, epidermal electrodes, and human-machine interfaces highlights the potential of this technique in various emerging applications of nanoelectronics, nano optoelectronics, and soft bioelectronics.

The proliferation and death of granulosa cells (GCs) in poultry play a decisive role in follicular fate and egg production. The follicular fluid (FF) contains a variety of nutrients and genetic substances to ensure the communication between follicular cells. Exosomes, as a new intercellular communication, could carry and transport the proteins, RNA, and lipids to react on GCs, which had been found in FF of various domestic animals. Whether exosomes of FF in poultry play a similar role is unclear. In this study, geese, a poultry with low egg production, were chosen, and the effect of FF exosomes on the proliferation and death of GCs was investigated. Firstly, there were not only a large number of healthy small yellow follicles (HSYFs) but also some atresia small yellow follicles (ASYFs) in the egg-laying stage. Also, the GC layers of ASYFs became loose interconnections, inward detachment, and diminished survival rate than that of HSYFs. Besides, compared to HSYFs, the contents of E2, P4, and the mRNA expression levels of ferroptosis-related genes GPX4, FPN1, and FTH1 were significantly decreased, while COX2, NCOA4, VDAC3 mRNA were significantly increased, and the structure of mitochondrial cristae disappeared and the outer membrane broke in the GC layers of ASYFs. Moreover, the ROS, MDA, and oxidation levels in the GC layers of ASYFs were significantly higher than those of HSYFs. All these hinted that ferroptosis might result in a large number of GCs death and involvement in follicle atresia. Secondly, FF exosomes were isolated from HSYFs and ASYFs, respectively, and identified by TEM, NTA, and detection of exosome marker proteins. Also, we found the exosomes were phagocytic by GCs by tracking CM‐Dil. Moreover, the addition of ASYF-FF exosomes significantly elevated the MDA content, Fe2+ levels, and the mitochondrial membrane potential in GCs, thus significantly inhibiting the proliferation of GCs, which was restored by the ferroptosis inhibitor ferrostatin-1. Thirdly, the proteomic sequencing was performed between FF-derived exosomes of HSYFs and ASYFs. We obtained 1615 differentially expressed proteins, which were mainly enriched in the protein transport and ferroptosis pathways. Among them, HMOX1 was enriched in the ferroptosis pathway based on differential protein-protein interaction network analysis. Finally, the role of HMOX1 in regulating ferroptosis in GCs was further explored. The highly expressed HMOX1 was observed in the exosomes of ASYF-FF than that in HSYF-FF. Overexpression of HMOX1 increased ATG5, LC3II, and NCOA4 expression and reduced the expression of FTH1, GPX4, PCBP2, FPN1 in the ferroptosis pathway, also promoted intracellular Fe2+ accumulation and MDA surge, which drove ferroptosis in GCs. The effects of HMOX1 on ferroptosis could be blocked by its inhibitor Znpp. Taken together, the important protein HMOX1 was identified in FF, which could be delivered to GCs via exosomes, triggering ferroptosis and thus determining the fate of follicles.

Lithography is critical in micro- and nanofabrication processes, enabling the development of integrated circuits, semiconductor devices, and various advanced electronic and photonic systems. However, there are challenges related to sustainability, efficiency, and yield, as well as compatibility with transient electronics. This work introduces a sustainable lithography paradigm employing mechanically peelable resists compatible with existing cleanroom processes. The resists exhibit near-zero adhesion to various substrates, facilitating efficient, cost-effective, environmentally friendly, and chemical-free mechanical stripping without observable particulate residues. The mechanical lift-off process enables scalable and 100%-yield pattern transfer using commercially available tape within seconds. Furthermore, the new paradigm supports distributed and in situ conformal manufacturing using the peelable resist as a "transferable stencil mask" to fabricate various functional devices on flexible and nonplanar surfaces, as well as ultra-thin biodegradable substrates. Overall, this work expands the potential for using lift-off as a standard process in the pan-semiconductor industry and opens new avenues for lithographic procedures aimed at the reliable mass production of transient electronics and integrated biodegradable devices, addressing growing sustainability issues caused by electronic waste.